Effects of Traditional Chinese Medicines on Serum NO and NOS/iNOS Activities in Weaned Piglets
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摘要: 为研究中药精制的两种饲料添加剂Ⅰ（鱼腥草10%、黄芪20%、茯苓15%、刺五加10%、山楂15%、当归10%、厚朴10%和瞿麦10%）和添加剂Ⅱ（金银花10%、黄芪20%、茯苓15%、刺五加10%、山楂15%、当归10%、厚朴10%和瞿麦10%）对断奶仔猪血清一氧化氮（NO）含量及一氧化氮合酶（NOS）、诱导型一氧化氮合酶（iNOS）活性影响，选择16窝胎次相近、日龄相同的杜长大三元仔猪，每窝9头左右，随机分成4组，每组4窝，分别为中药Ⅰ组、中药Ⅱ组、抗生素组和对照组。在相同的基础日粮情况下，前3个处理组分别添加中药饲料添加剂Ⅰ（4 kg·t-1）、中药饲料添加剂Ⅱ（4 kg·t-1）、金霉素（70 g·t-1）和杆菌肽锌（30 g·t-1）。在仔猪断奶后1、4、7、14、28 d采血，分析断奶仔猪血清中NO含量、NOS和iNOS活性的变化。结果表明，断奶14 d时，中药组供试猪血清NO含量分别比对照组提高了65.75%（P < 0.05）和56.05%（P < 0.05）。断奶28 d时，中药Ⅰ组和中药Ⅱ组的NOS活性分别比对照组提高17%（P < 0.05）和16.89%（P < 0.05）。断奶1 d时，中药Ⅰ组的iNOS活性较抗生素组降低6.4%（P > 0.05），较对照组降低10%（P > 0.05）；中药Ⅱ组较对照组降低6.5%（P > 0.05），但差异不显著。结果表明中药饲料添加剂能提高断奶仔猪血清NO含量和NOS活性，降低iNOS活性，对仔猪的胃肠道黏膜产生保护作用，缓解断奶应激，具有替代抗生素的潜能。Abstract: The effects of addition of two formulated herbal traditional Chinese medicines (TCM) in feed on serum NO and activities of NOS and iNOS of weaned piglets were investigated. TCM I was formulated to contain 10% Houttuynia cordata Thunb., 20% Astragalus membranaceus, 15% Poria cocos, 10% Acanthopanax senticosus, 15% Crataegus pinnatifida Bunge, 10% Angelica sinensis, 10% Magnolia officinalis and 10% Dianthus superbus, whereas TCM Ⅱ, 10% Lonicera japonica Thunb., 20% Astragalus membranaceus, 15% P. cocos, 10% A. senticosus, 15% C. pinnatifida Bunge, 10% A. sinensis, 10% M. officinalis and 10% D. superbus. From 16 litters (about 9 heads per litter) of similar parity and age, the breastfeeding piglets were randomly divided into four groups, namely the TCM Group Ⅰ, TCM Group Ⅱ, Antibiotics Group and Control. TCM I at 4 kg·t-1, TCM Ⅱ at 4 kg·t-1, chlortetracycline at 70 kg·t-1 or bacitracin zinc at 30 kg·t-1 was added to a same basal diet for the treatment groups. Blood samples of the piglets were taken at 1, 4, 7, 14 and 28 days after weaning to determine the serum NO and activities of NOS and iNOS. The contents of NO in TCM Group Ⅰ and Ⅱ piglets increased by 65.75% and 56.05%, respectively, as compared to Control (P < 0.05). After weaning for 28 days, the activity of NOS of piglets in TCM Group Ⅰ was 17% and that of TCM Group Ⅱ, 16.89%, higher than Control (P < 0.05). One day after weaning, the activity of iNOS in piglets in TCM Group Ⅰ decreased 6.4% in comparison to Antibiotics Group (P > 0.05) and declined 10% over Control (P > 0.05), while that of TCM Group Ⅱ decreased 6.5% over Control (P > 0.05). The results indicated that the TCMs could increase serum NO and NOS activity and reduce iNOS activity protecting the gastrointestinal mucosa in weaned piglets. The addition effectively alleviated weaning stress on the piglets suggesting a potential for the TCMs to replace antibiotics administration for the purpose.
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Keywords:
- traditional chinese medicine /
- weaned piglets /
- NO /
- NOS /
- iNOS
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0. 引言
【研究意义】水稻纹枯病是由Rhizoctonia solani Kühn引起的真菌性病害，是世界上水稻最严重的病害之一，威胁着水稻的产量和质量[1]，一般造成10%～30%产量损失，严重时达到50%以上[2]。近年来，由于栽培措施、感病品种大面积种植以及环境条件的影响，水稻纹枯病的危害逐年加重，已经成为我国南方部分稻区的水稻三大病害之首[3]。目前，使用杀菌剂进行化学防治仍是水稻纹枯病最有效的防控方法[4]。但随着药剂的长年使用和剂量的提高，会降低病原菌对防治药剂的敏感性，产生抗药性[5]，因此，监测水稻纹枯病菌对防治药剂的敏感性具有重要意义。【前人研究进展】井冈霉素是我国产量最大的微生物源抗生素，广泛用于防治水稻纹枯病，但由于单一长期的使用，在一些地区已有产生井冈霉素抗药性菌株的报道[3-6]。为此，我国登记了一些药剂替代井冈霉素用于防治水稻纹枯病，如苯醚甲环唑、咪鲜胺、已唑醇、噻呋酰胺等[3-7]，其他一些未进行登记的药剂也在用于防治水稻纹枯病，如丙环唑和吡唑醚菌酯及其复配剂[8-9]。丙环唑属于三唑类杀菌剂，具有内吸性、广谱、高效等特点，对丝核菌属的病原真菌具有很高的生物活性[10]。唐正合等研究表明，丙环唑对水稻纹枯病菌菌丝的抑制作用较好，在田间的防治效果可达到89.15%[11]。吡唑醚菌酯属于甲氧基丙烯酸酯类，具有广谱、高效、毒性低等特点，对非靶标生物安全[12]。孙雪等研究不同药剂对纹枯病菌的毒力作用表明，吡唑醚菌酯对纹枯病菌菌丝的抑制作用较好，其EC50值为0.198 mg·L−1[13]，刘郁等研究表明吡唑醚菌酯对水稻纹枯病也有较好的防治效果[14]。随着药剂使用年限延长和剂量的提高，病原菌的敏感性可能会降低以及产生抗性菌株。因此需要检测病原菌对药剂的敏感性情况，连娜娜等[7]测定东北三省水稻纹枯病病菌对苯醚甲环唑和咪鲜胺的敏感性，谭清群等[3]测定贵州水稻纹枯病菌对噻呋酰胺和己唑醇的敏感性，为水稻纹枯病的科学选药提供了依据。【本研究切入点】目前，丙环唑和吡唑醚菌酯用于水稻纹枯病及其他水稻病害的防治，但水稻纹枯病菌对这两种药剂的敏感性及药剂间的相关性尚不清楚，也未见相关文献报道。【拟解决的关键问题】以贵州省不同地区分离的水稻纹枯病菌菌株为研究对象，测定所得菌株对这两种药剂的敏感性，并分析两种药剂间的相关性，以期为贵州省水稻纹枯病的科学防治和药剂的合理使用提供参考。
1. 材料与方法
1.1 供试菌株
水稻纹枯病菌：于2018年从贵州省遵义市湄潭县、黔东南州黄平县、黔东南州三穗县及黔南州惠水县等水稻产区采集水稻纹枯病发生严重的植株样本，经分离纯化得到52株水稻纹枯病菌。其中，湄潭（MT）18株、黄平（HP）12株、三穗（SS）9株、惠水（HS）13株。试验于2018年9～12月在贵州大学农产品质量安全实验室进行。
1.2 供试药剂及培养基
96%丙环唑原药（连云港埃森化学有限公司），97.5%吡唑醚菌酯原药（江苏新农化工有限公司），用丙酮配制10 000 μg·mL−1母液，置于4℃冰箱备用。
PDA培养基：马铃薯200 g、葡萄糖20 g、琼脂 17～20 g，去离子水1 000 mL，121℃灭菌20 min备用。
琼脂培养基：琼脂15 g，去离子水1 000 mL，121℃灭菌20 min备用。
1.3 水稻纹枯病菌分离
采用水琼脂法[15]。将采集的发病植株样本沿病斑剪成小块，75%的酒精消毒30 s后用无菌水冲洗，再用灭菌的滤纸吸干表面水珠，置于水琼脂平板上，于28℃培养箱中黑暗培养3 d，将病斑周围长出的菌落转接于PDA平板上，单菌丝纯化3代后转接至PDA试管斜面上，置于4℃冰箱保存。
1.4 水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性测定
采用菌丝生长速率法[16]。将丙环唑和吡唑醚菌酯母液用无菌水稀释为系列梯度浓度，取1 mL稀释药剂加入到9 mL预先融化的PDA培养基中，倒入灭菌培养皿混匀，配制含丙环唑（0.073、0.220、0.660、2.000、6.000 μg·mL−1）和吡唑醚菌酯（0.125、0.250、0.500、1.000、2.000 μg·mL−1）系列质量浓度的PDA平板，其中吡唑醚菌酯含药平板中加入50 mg·L−1水杨羟肟酸[12]。将培养的菌株用6 mm打孔器沿菌落边缘打取菌饼，接种至含药PDA平板上，以不加药为对照，每个处理重复3次，置于28℃培养2 d后，用十字交叉法测量菌落直径。
1.5 数据处理
根据公式（1）计算菌丝生长抑制率，利用Excel 2010计算药剂对菌株的有效抑制中浓度（EC50值）、相关系数（R值）及毒力回归方程。使用SPSS 24就水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性进行相关性分析。
菌丝生长抑制率(%)=对照菌落生长直径−处理菌落生长直径对照菌落生长直径−6×100 1.6 水稻纹枯病菌对两种药剂敏感性的相关性
参照徐建强等[17]的方法。从各地随机选取9株水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性进行相关性分析。将菌株对丙环唑的EC50值作为x轴，对吡唑醚菌酯的EC50值作为y轴，进行线性回归分析，求出线性回归方程（y=bx+a）。根据决定系数（R2）、b值及F检验的显著水平（P值），分析两种药剂对水稻纹枯病菌敏感性之间的关系，其中P＜0.05，b值为正，说明两种药剂间存在正相关性，b值为负，说明两种药剂间存在负相关性；P＞0.05，说明两种药剂间无相关性[7]。
2. 结果与分析
2.1 贵州省水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性及频率分布
贵州省52株水稻纹枯病菌对丙环唑的敏感性呈连续性分布，EC50值为0.058～2.381 μg·mL−1，平均值为0.422 μg·mL−1，敏感性相差41倍，表明水稻纹枯病菌对丙环唑的敏感性不同。将水稻纹枯病菌对丙环唑的EC50值进行分组，以0.05 μg·mL−1为下限，组距为0.48 μg·mL−1，共分为5组。统计各组的菌株数，计算其出现频率，制作水稻纹枯病菌菌株对丙环唑的敏感性频率分布图（图1）。由敏感性频率分布图可知，EC50值在0.05～0.53 μg·mL−1的菌株数较多，频率为67.3%。通过SPSS进行Shapiro-Wilktest正态性检验分析，结果显示水稻纹枯病菌对丙环唑的敏感性不符合正态分布（W=0.702，P=0.00＜0.05），表明纹枯病菌对丙环唑的敏感性出现分化，出现了敏感性下降的菌株[14]。
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图 1 水稻纹枯病菌对丙环唑（A）和吡唑醚菌酯（B）的敏感性Figure 1. Sensitivities of R. solani to propiconazole (A) and pyraclostrobin (B)贵州省52株水稻纹枯病菌对吡唑醚菌酯的敏感性呈连续性分布，EC50值为0.077～0.936 μg·mL−1，平均值为0.313 μg·mL−1，敏感性弱的菌株EC50值是敏感性较强的12.1倍，表明水稻纹枯病菌对吡唑醚菌酯的敏感性存在差异。将水稻纹枯病菌对吡唑醚菌酯的EC50值进行分组，以0.060 μg·mL−1为下限，组距为0.188 μg·mL−1，共分为5组。统计各组的菌株数，计算其出现频率，制作水稻纹枯病菌菌株对吡唑醚菌酯的敏感性频率分布图（图2）。由敏感性频率分布图可知，EC50值在0.060～0.248 μg·mL−1的菌株数较多，频率为51.9%。通过SPSS进行Shapiro-Wilktest正态性检验分析，结果显示水稻纹枯病菌对吡唑醚菌酯的敏感性不符合正态分布（W=0.777，P=0.00＜0.05），表明纹枯病菌对吡唑醚菌酯的敏感性出现分化，出现了敏感性下降的菌株[7]。
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图 2 水稻纹枯病菌对丙环唑（A）和吡唑醚菌酯（B）的敏感性频率分布Figure 2. Frequency distributions of sensitivities of R. solani to propiconazole (A) and pyraclostrobin (B)2.2 不同地区纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性分析
贵州省不同地区的纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性不同（表1）。其中，湄潭、三穗地区菌株对丙环唑的EC50均值分别为0.623、0.635 μg·mL−1，两地之间的差异不显著，而与惠水（0.256 μg·mL−1）、黄平（0.140 μg·mL−1）两地的均值存在显著差异；湄潭地区菌株对吡唑醚菌酯的EC50均值为0.525 μg·mL−1，与惠水、黄平、三穗三个地区的均值存在显著差异，而惠水、黄平、三穗菌株对吡唑醚菌酯的EC50均值无显著差异。
表 1 不同地区纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性Table 1. Pesticide sensitivities of R. solani from different regions采集地
Locality菌株数
Isolate number丙环唑 propiconazole 吡唑醚菌酯 pyraclostrobin EC50范围
Range of EC50/（μg·mL−1）EC50均值
Average value of EC50/（μg·mL−1）EC50范围
Range of EC50/（μg·mL−1）EC50均值
Average value of EC50/（μg·mL−1）惠水 HS Huishui 13 0.065～0.519 （0.256±0.048）b 0.077～0.234 （0.153±0.016）b 湄潭 MT Meitang 18 0.077～2.381 （0.623±0.169）a 0.156～0.936 （0.525±0.062）a 黄平 HP Huangping 12 0.066～0.209 （0.140±0.013）b 0.126～0.383 （0.241±0.020）b 三穗 SS Sansui 9 0.498～1.060 （0.635±0.056）a 0.127～0.317 （0.217±0.019）b 注：同列数字后不同字母表示经新复极差法检验差异显著（P＜0.05）。
Note: Data followed by the different letters are significantly by new multiple range test（ P ＜0.05）.2.3 不同地区水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的抗性水平分析
参考梁梦琦[12]的方法，以EC50均值进行抗性水平划分。从抗性频率分布表可知（表2），多数水稻纹枯病菌菌株对两种药剂都处于敏感水平，湄潭地区出现了对丙环唑和吡唑醚菌酯低抗水平的菌株，抗性频率分别为16.7%、13.3%。惠水、湄潭、黄平、三穗菌株对丙环唑的抗性水平范围分别为0.14～1.23、0.18～5.64、0.16～0.50、1.18～2.51，对吡唑醚菌酯的抗性水平范围分别为0.24～0.75、0.50～3.01、0.40～1.22、0.41～1.01，其中黄平菌株对丙环唑的抗性水平最低，惠水菌株对吡唑醚菌酯的抗性水平最低。
表 2 不同地区水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的抗性水平Table 2. Pesticide resistances of R. solani from different regions采集地
Locality菌株数
Isolate number丙环唑 吡唑醚菌酯 不同抗性水平菌株频率
Frequencies at different resistance level/%抗性频率
Resistance frequencies/%抗性水平范围
Range of resistance level不同抗性水平菌株频率
Frequencies at different resistance level/%抗性频率
Resistance frequencies/%抗性水平范围
Range of resistance levelRf＜3 3＜Rf≤10 Rf＜3 3＜Rf≤10 惠水
HS Huishui13 100 0 0 0.14～1.23 100 0 0 0.24～0.75 湄潭
MT Meitang18 83.3 16.7 16.7 0.18～5.64 86.6 13.3 13.3 0.50～3.01 黄平
HP Huangping12 100 0 0 0.16～0.50 100 0 0 0.40～1.22 三穗
SS Sansui9 100 0 0 1.18～2.51 100 0 0 0.41～1.01 2.4 不同来源菌株对丙环唑和吡唑醚菌酯的系统聚类分析
利用SPSS 24软件将52株水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的EC50值进行系统聚类分析，结果如图3所示。52株纹枯病菌对丙环唑的EC50共分为4个聚类组，第一组共有29株，其中湄潭9株（MT13，MT14，MT8，MT18，MT5，MT17，MT9，MT16，MT6），黄平12株（HP4，HP2-8，HP2-5，HP2-7，HP6，HP7，HP8，HP2-4，HP9，HP2-6，HP2，HP12），惠水8株（HS10，HS2，HS14，HS4，HS7，HS9，HS11，HS3）；第二组共有2株，其中湄潭1株（MT1），三穗1株（SS1）；第三组共有18株，其中湄潭5株（MT10，MT11，MT15，MT12，MT7），惠水5株（HS2-9，HS2-1，HS2-10，HS2-3，HS2-11），三穗8株（SS4，SS7，SS9，SS8，SS2，SS3，SS5，SS6）；第四组共有3株，均为湄潭菌株（MT2，MT3，MT4）。52株纹枯病菌对吡唑醚菌酯的EC50值也分为4个聚类组，第一组共有12株，其中惠水7株（HS14，HS2-1，HS2，HS7，HS9，HS2-3，HS2-9），湄潭1株（MT8），黄平2株（HP2，HP6），三穗2株（SS8，SS2）；第二组共有28株，其中惠水6株（HS11，HS10，HS2-10，HS2-11，HS4，HS3），三穗7株（SS4，SS6，SS5，SS1，SS3，SS9，SS7），黄平9株（HP4，HP7，HP2-8，HP12，HP2-5，HP2-4，HP2-7，HP8，HP9），湄潭6株（MT11，MT14，MT9，MT2，MT16，MT12）；第三组共有5株，其中湄潭4株（MT3，MT1，MT17，MT6），黄平1株（HP2-6），第四组共有7株，均为湄潭菌株（MT15，MT4，MT18，MT13，MT7，MT5，MT10）。不同地理来源的菌株均能出现在同一聚类组中，只有湄潭地区的几个菌株单独在一组，表明水稻纹枯病菌对这两种药剂的敏感性差异与菌株地理来源在地区之间无明显相关性[18]。
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图 3 水稻纹枯病菌对丙环唑（A）和吡唑醚菌酯（B）的EC50值系统聚类分析注：A代表丙环唑聚类分析，B代表吡唑醚菌酯聚类分析Figure 3. Cluster analysis on EC50 of R. solani to propiconazole （A） and pyraclostrobin （B）Note: A=cluster analysis for propiconazole, B=cluster analysis for pyraclostrobin2.5 水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的相关性
水稻纹枯病菌菌株对丙环唑和吡唑醚菌酯敏感性的决定系数（R2）为0.001 2，线性回归方程为y = 1.498 1x + 0.081 2，进行F检验为差异不显著（P=0.84＞0.05），说明水稻纹枯病菌对这两种药剂的敏感性不存在相关性（图4），即丙环唑与吡唑醚菌酯之间未产生交互抗性，生产上可交替使用。
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图 4 水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯敏感性的相关性Figure 4. Correlation on pesticide sensitivities of R. solani between propiconazole and pyraclostrobin3. 讨论与结论
本研究采用菌丝生长速率法，测定了从贵州省黄平、三穗、湄潭、惠水等四个地区分离的52个菌株对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性。供试菌株对丙环唑的EC50值为0.058～2.381 μg·mL−1，均值为0.422 μg·mL−1。孙树青等[19]测定水稻纹枯病菌对丙环唑的EC50值为0.045 μg·mL−1，与本研究的EC50均值相差较大，可能是不同地区间的施药方式、用药量、用药次数以及使用年限不同所导致。不同菌株之间敏感性差异较大，EC50值最大与最小相差41倍，表明出现了敏感性下降的群体，水稻纹枯病菌对丙环唑存在抗药性风险，应加强纹枯病菌对丙环唑的抗性监测。供试菌株对吡唑醚菌酯的EC50值为0.077～0.936 μg·mL−1，均值为0.313 μg·mL−1，与孙雪[20]的测定结果相近（0.198 μg·mL−1），表明纹枯病菌对吡唑醚菌酯的敏感性仍较敏感，可以继续用其防治水稻纹枯病。
水稻纹枯病病原菌存在菌丝融合群和异核现象，可能会导致病原菌的致病力和敏感性存在差异。范文艳等[21]报道黑龙江省水稻纹枯病病菌存在明显的致病性分化。陈涛等[22]报道浙江省水稻纹枯病菌分属于AG-1融合群（AG-1-I A、AG-1-I B、AG-1-I C），且AG-1融合群菌株间致病力差异无相关性。刘志恒等[23]报道辽宁省水稻纹枯病病菌分属于4个菌丝融合群（AG1-IA，AG4-HGI，AG4-HGII融合群和双核菌菌丝融合群）。张优等[24]研究表明水稻纹枯病病菌多核菌株均表现为较强致病性而双核菌株均表现出较弱致病性。水稻纹枯病病菌不同菌株间对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性差异与菌丝融合群和异核是否有关，还需要进一步验证。
不同地区间的水稻纹枯病菌群体对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性不同，对于丙环唑而言，湄潭、三穗两个地区的纹枯病菌群体与黄平、惠水两个地区的敏感性差异显著；而吡唑醚菌酯对湄潭地区纹枯病菌群体与惠水、黄平、三穗3个地区的敏感性差异显著，这可能与当地这两种药的使用年限和使用量不同有关。4个地区中仅有湄潭地区出现对丙环唑和吡唑醚菌酯的低抗菌株，抗性频率分别为16.7%、13.3%。总体而言，贵州省水稻纹枯病菌对这两种药剂仍敏感，且两药剂之间也未产生交互抗性，表明这两种药剂仍可继续用于防治水稻纹枯病。为了避免抗药性的产生，应与其他药剂轮换使用，同时需要适当减少用药量和用药次数。
研究结果表明，在所有供试菌株中，多数菌株对丙环唑和吡唑醚菌酯敏感性较高，不同地区之间菌株群体的敏感性不同。水稻纹枯病菌对这两种药剂的敏感性差异与菌株地理来源无明显相关性。丙环唑与吡唑醚菌酯之间未产生交互抗性，生产上可以交替使用防治水稻纹枯病。
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表 1 基础日粮配方及营养水平
Table 1 Compositions and nutrient levels of basal diet
原料 含量 营养水平 含量 玉米/% 56 代谢能/(MJ·kg-1) 12.59 豆粕/% 12 粗蛋白/% 19.89 膨化大豆/% 16 赖氨酸/% 1.15 乳清粉/% 4 蛋氨酸+胱氨酸/% 0.68 鱼粉/% 5 钙/% 0.58 脂肪粉/% 1.5 磷/% 0.45 柠檬酸/% 0.5 大豆油/% 1 预混料/% 4 注：预混料由硫酸铜、硫酸锰、硫酸亚铁、氧化锌、亚硒酸钠、磷酸氢钙、碘酸钙、氯化胆碱、多维、蛋氨酸、赖氨酸、复合酶等组成。 
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表 2 断奶仔猪血清NO含量
Table 2 Serum NO in weaned piglets
[单位/(μmol·L-1)] 组别 断奶1 d 断奶4 d 断奶7 d 断奶14 d 断奶28 d 中药Ⅰ组 91.80±16.46 94.42±23.76 105.22±10.73 94.75±20.21b 105.13±11.95b 中药Ⅱ组 91.41±34.05 98.04±32.72 100.50±45.44 89.20±23.07b 104.27±21.59b 抗生素组 86.74±29.92 90.58±21.66 100.47±24.20 84.38±25.00b 87.83±23.33ab 对照组 75.10±11.44 74.53±22.60 90.82±25.30 57.16±12.88a 74.40±22.35a 注：同列数字后不同小写字母表示差异显著(P＜0.05)，表 3、4同。
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表 3 断奶仔猪血清NOS活性
Table 3 Serum NOS activity in weaned piglets
[单位/(U·mL-1)] 组别 断奶1 d 断奶4 d 断奶7 d 断奶14 d 断奶28 d 中药Ⅰ组 21.93±2.79 20.41±1.05ab 21.61±6.08 21.59±2.69 22.30±2.84b 中药Ⅱ组 23.48±4.39 21.52±0.67b 21.07±1.88 22.06±2.06 22.28±1.62b 抗生素组 22.52±2.93 19.77±0.86ab 20.39±2.48 20.48±3.59 20.58±2.67ab 对照组 21.49±2.89 18.96±2.23a 19.58±2.54 19.85±1.45 19.06±2.74a
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表 4 断奶仔猪血清iNOS活性
Table 4 Serum iNOS activity in weaned piglets
[单位/(U·mL-1)] 组别 断奶1 d 断奶4 d 断奶7 d 断奶14 d 断奶28 d 中药Ⅰ组 17.44±2.32 14.02±3.94 14.93±3.31 15.74±2.65 15.06±1.47 中药Ⅱ组 18.12±3.33 14.84±2.56 15.06±1.57 15.25±1.53 15.33±4.03 抗生素组 18.64±4.35 15.33±1.96 15.52±4.53 15.84±1.78 15.77±3.77 对照组 19.38±5.91 15.67±3.99 15.82±4.76 15.74±2.56 15.94±2.28
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