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套袋对浙梨6号果实外观和内在品质的影响

曾少敏, 陈小明, 黄保平, 黄新忠, 姜翠翠

曾少敏,陈小明,黄保平,等. 套袋对浙梨6号果实外观和内在品质的影响 [J]. 福建农业学报,2024,39(8):968−976. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2024.08.010
引用本文: 曾少敏,陈小明,黄保平,等. 套袋对浙梨6号果实外观和内在品质的影响 [J]. 福建农业学报,2024,39(8):968−976. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2024.08.010
ZENG S M, CHEN X M, HUANG B P, et al. Appearance and Quality of Zheli No. 6 Pears Affected by Bagging [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2024,39(8):968−976. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2024.08.010
Citation: ZENG S M, CHEN X M, HUANG B P, et al. Appearance and Quality of Zheli No. 6 Pears Affected by Bagging [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2024,39(8):968−976. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2024.08.010

套袋对浙梨6号果实外观和内在品质的影响

基金项目: 福建省科技计划公益类专项(2020R10280015);福建省农业高质量发展超越“5511”协同创新工程项目(XTCXGC2021006);泉州市科技计划项目(2022N028);福建省种业创新与产业化工程项目(zycxny2021010)
详细信息
    作者简介:

    曾少敏(1987 —),男,硕士,助理研究员,主要从事果树育种与栽培技术研究,E-mail:zengshaomin1@163.com

    通讯作者:

    姜翠翠(1982 —),女,博士,副研究员,主要从事果树育种和栽培技术研究,E-mail:cuiliao2046@163.com

  • 中图分类号: S661.2

Appearance and Quality of Zheli No. 6 Pears Affected by Bagging

  • 摘要:
      目的  研究不同套袋处理对浙梨6号果实外观和内在品质性状的影响,为改善浙梨6号综合品质、提升果品价值提供参考。
      方法  以浙梨6号为试材,设置不同果袋、不同套袋方式和不同时期套袋处理,以果实不套袋为对照,测定成熟期果实的外观和内在品质的变化情况。
      结果  不同果袋处理果面亮度均显著高于对照(P < 0.05);套白色单层大袋果实果锈指数显著低于对照(P < 0.05),可溶性固形物、可溶性总糖含量和甜度值与对照无显著差异。二次套袋果实果锈指数显著低于对照和一次套袋,可溶性固形物、可溶性总糖、可滴定酸和维生素C(Vitamin C, VC)含量与对照无显著差异,果糖、葡萄糖含量和甜度值显著高于对照和一次套袋(P < 0.05)。盛花后10、20、30 d套袋,黄绿果较多(≥50%),果锈指数较低(0.471~0.600),果点直径和密度显著低于对照,而盛花后60 d套袋,全锈果较多(72.5%);除盛花后10 d处理外,各时期套袋果实可溶性固形物、可溶性总糖、可滴定酸和VC含量均与对照无显著差异。
      结论  套白色单层大袋对浙梨6号果实外观品质改善效果显著,同时采用“白色小蜡袋+白色单层大袋”的二次套袋方式,盛花后10~30 d为生产黄绿色果品的防锈套袋适宜期,盛花后60 d为生产全锈褐皮果品的不防锈套袋适宜期,套袋对果实内在品质无显著负面影响。
    Abstract:
      Objective  Improvements on the appearance and fruit quality of Zheli No. 6 pear by bagging were studied.
      Method  Zheli No. 6 pear s on the trees were covered once or twice with a variety of pouches at different times of the fruit development in a field experiment. Appearance and eating quality of the mature pears were monitored.
      Result   The bagged fruits were significantly brighter and more shiny than the counterparts without covering (P<0.05). The pears matured in the white single-layer large pouches had significantly lower fruit rust index (FRI) than control (P<0.05) but no significant differences on the contents of soluble solids, total soluble sugar, and sweetness. Those being bagged twice were significantly lower on FRI than control or those being bagged only once. Nor did they differ significantly from control on the contents of soluble solids, total soluble sugar, titratable acid, and VC, but contained significantly more fructose and glucose than control or those were bagged a single time (P<0.05). When the bagging was held 10d, 20d, and 30d after full bloom, equal to or more than half of the resulting fruits were yellowish green with few rusty streaks and spots having an FRI of 0.471-0.600 and low on latitudinal measurements and flesh density. Bagging 60d after full bloom produced 72.5% of the fruits with fully rusty-appearing peels. And, except for those bagged 10d after full bloom, no bagged pears significantly differed from control on the contents of soluble solids, total soluble sugar, titratable acid, and VC.
      Conclusion   Bagging Zheli No. 6 pears on the tree with the white single-layer large pouches significantly affected the appearance of the matured fruits. Using the white small wax pouch in 10-30d after full bloom followed by the white single-layer large pouch for the bagging fostered bearing of yellowish green fruits. Whereas the non-rust-proof pouches for bagging once in 60d after full bloom encouraged formation of a fully rust, brown peel. Meanwhile, the appealing eating quality of Zheli No. 6 pears would basically be intact under the bagging treatments.
  • 【研究意义】木薯(Manihot esculenta Crantz)作为世界三大薯类之一,具有极强的适应性,能够抗旱和耐贫瘠,已被广泛种植于全球近百个国家和地区,为全球十分之一以上人口提供主粮[1]。在我国,木薯是广西、广东和海南地区的一种重要的经济作物,不仅是当地重要的经济作物,而且还具有巨大的发展潜力,其淀粉可以用来生产燃料乙醇和工业淀粉,是一种重要的绿色能源作物 [1]。糖基化修饰是一种普遍存在的植物修饰反应,其中催化该反应的酶是糖基转移酶(glycosyl transferases, GTs)。GTs可以将糖基,如葡萄糖、半乳糖和木糖等,添加到不同的天然化合物中,从而形成更稳定的糖酯或糖苷 [2-4]。其中一类使用UDP作为糖基供体的GTs被称为UDP依赖型糖基转移酶(UDP-glycosyltransferases,UGTs) [5],它们在植物生长发育和逆境胁迫响应过程中发挥着重要作用,主要参与对植物激素和重要次生代谢物的修饰 [6]。地毯草黄单胞菌(Xamthomonas axonopodis pv. Manihotis, Xam)引起的木薯细菌性枯萎病是木薯的主要病害之一 [7- 8]。因此,研究木薯UDP依赖型糖基转移酶基因的功能,对揭示其在木薯应答生物胁迫中的作用机制具有重要意义。【前人研究进展】目前,已经发现的植物GTs家族数量超过100个,几乎所有植物中都发现了这类酶 [9]。在拟南芥中,UGT84B1基因的过表达会导致糖基化生长素的含量升高[10]。过表达UGT73C6UGT73C5基因会导致转基因植株中糖基化油菜素类固醇的含量增加 [11-12]。ABA在植物应对非生物胁迫,如干旱和高盐中发挥着重要作用,UGTs家族基因也可以通过糖基化修饰来影响ABA在植物体内的稳态 [13]。在拟南芥中,UGT71B6UGT71B7UGT71B8等基因可以通过调节ABA的含量来调控植株在非生物逆境中的耐受性 [13-14]UGT71C5基因的过表达会导致转基因植株对干旱的敏感性增加,这主要是因为ABA的糖酯化使得植株中ABA的含量减少 [15]。植物对生物胁迫的响应主要是通过水杨酸和茉莉酸介导的两条信号通路,这两条通路往往以拮抗的形式起作用 [16-18]。对UGT76B1基因的研究表明,糖基化的小分子参与了连接水杨酸和茉莉酸途径的植物防御信号的转导。缺失UGT76B1基因会提高植株对丁香假单胞菌的抗性,从而降低对坏死性铜斑病链球菌的抗性;而在无病原菌侵染的情况下,过表达UGT76B1基因会使植物利用水杨酸信号通路抵御病菌的能力降低,但同时会提高植物利用茉莉酸信号通路抵御病菌的能力 [19-21]。【本研究切入点】分析木薯UGTs基因家族的转录组数据发现,MeUGT25基因的表达显著受到Xam菌株的诱导。MeUGT25基因与MeUGT85K4/MeUGT85K5具有很高的同源性,但MeUGT85K4/MeUGT85K5基因主要参与木薯生氰糖苷的合成 [22],而MeUGT25基因的功能仍有待深入研究。【拟解决的关键问题】本研究构建MeUGT25基因的VIGS载体,并采用农杆菌侵染的方式对木薯叶片中的MeUGT25基因进行沉默,评估该基因在木薯抵抗细菌性枯萎病中的作用,以期为进一步研究该基因参与木薯抗细菌性枯萎病的机理奠定基础。

    供试木薯品种:华南124(SC124),由中国热带农业科学院提供。

    供试试剂:DNA回收纯化试剂盒、质粒提取试剂盒、pMD18-T载体、荧光定量PCR反应试剂、Nimble Cloning克隆试剂盒、反转录试剂盒,均购自天根生化科技(北京)有限公司;限制性核酸内切酶购自Thermo Fisher Scientific公司,PCR引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,pTRV载体由海南大学施海涛老师实验室惠赠。

    主要仪器设备:超微量紫外分光光度计(Thermo,美国),PCR仪(耶拿,德国),EPS300电泳仪(Tanon,上海),CT15RT高速冷冻离心机(TECHCOMP,中国),4100凝胶成像仪(Tanon,上海),MX3000荧光定量PCR仪(安捷伦,美国)。

    从GEO数据库中下载木薯叶片在Xam处理下的表达数据 [23],并从中挑选MeUGTs基因家族的表达数据进行分析 [7]

    首先提前将Xam母液进行复苏,吸取1 mL复苏的菌液至刚配置的LB液体培养基,培养至OD600=0.6左右。用MgCl2溶液稀释重悬菌液至OD600=0.2(MgCl2终浓度10 mmol·L−1,加入万分之五的表面活性剂silwet L-77)。采用种植45 d后的木薯,使用注射器将稀释的菌液从倒数第二片叶片开始接种,接种至少6片木薯叶片。然后置于温室中继续培养(注意保湿) [24],处理5 d和7 d后,选择倒数第2~3片完全展开叶提取总RNA,进行反转录。使用设计好的MeUGT25基因的定量引物进行荧光定量PCR,内参基因使用木薯MeEF1a基因,根据2−ΔΔCT方法计算基因的相对表达量。

    根据MeUGT25基因(Manes.04G015600.1)的核苷酸序列挑选干扰片段,干扰片段序列的挑选原则为:插入病毒载体的基因片段长度在200~350 bp;避免UGT基因家族高度保守的序列;挑选MeUGT25基因自身特异的序列;根据以上原则设计干扰载体引物(表1),并通过扩增获得291 bp的片段 [25]。扩增程序:95 ℃ 5 min;35个循环:95 ℃ 10 s,57 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s;72 ℃ 10 min;16 ℃ 保存。反应体系:ddH2O 8.0 μL;2×PrimeStar Max 10.0;上游引物/下游引物 0.5 μL;模板 1.0 μL。PCR产物用1%琼脂糖凝胶电泳进行检测,回收目的片段连接至T载体,然后转化大肠杆菌TOP10感受态细胞。测序正确后通过双酶切连接至pTRV载体,进行菌液PCR和双酶切验证,全部正确后保留菌液和质粒。

    表  1  引物序列
    Table  1.  Sequences of primers applied
    引物名称
    Primer
    上游引物
    Forward Primer(5′-3′)
    下游引物
    Reverse Primer(5′-3′)
    用途
    Usage
    MeUGT25gtgagtaaggttaccgaattcTTTGATTGCCCAGATCGTCGgagacgcgtgagctcggtaccCAGGCTGGTGGCTACAACGG载体构建
    qMeUGT25CCGGAATTCTTTGATTGCCCAGATCGTCGCGGGGTACCCAGGCTGGTGGCTACAACG荧光定量
    MeEF1aTGAACCACCCTGGTCAGATTGGAAAACTTGGGCTCCTTCTCAAGCTCT荧光定量
    划线部分为上游同源臂/下游同源臂+酶切位点 。
    Underline shows upstream homology arm/downstream homologous arm with restriction enzyme digestion sites.
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    将干扰载体pTRV2-MeUGT25和空白载体pTRV2分别转入农杆菌(GV3010菌株),然后将农杆菌分别注射到木薯叶片中,共注射10个植株,在最下面一片叶片的基部进行注射,注射后的植株置于温室中并注意保湿。侵染14 d后从每株倒数第二片开始取样,取2~3片叶片提取RNA并进行反转录,采用实时荧光定量PCR检测MeUGT25基因的表达量(表1)。反应体系:ddH2O 8.0 μL;2×SYBR qPCR Master Mix 10.0 μL;上游引物/下游引物 0.5 μL;模板 1.0 μL。内参基因使用木薯MeEF1a基因。反应程序:95 ℃预变性30 s;95 ℃10 s,57 ℃ 30 s,40个循环;然后通过熔解曲线(95 ℃ 15 s,57 ℃ 1 min,95 ℃ 15 s)分析检测引物的特异性。使用2−△△Ct法计算MeUGT25基因的相对表达量(3次生物学重复)。

    待侵染14 d后检测基因沉默效果,随后选择成功干扰的植株,从靠近基部的叶片开始接种Xam,接种6片;对照叶片也从靠近基部的的叶片开始接种Xam。在接种Xam菌液的0 d和6 d时,分别使用打孔器取侵染后的木薯叶片,每个处理收集10个叶圆盘,叶片样品用无菌水漂洗2 min(重复3次),洗干净后将叶片碾碎。然后将样品进行梯度稀释(103、104、105、106、107、108),取10 μL不同浓度梯度(6个浓度梯度)的菌液接种至LB平板,每个浓度梯度重复3次。平板密封恒温培养箱培养(28 ℃, 16 h),最后统计细菌数量。分别在0 d和6 d时,观察表型变化并拍照记录。

    对从GEO数据库中下载的转录组数据进行分析 [23],发现Xam菌株能够诱导MeUGT25基因的表达上调。进一步使用Xam菌株处理木薯叶片,定量PCR分析显示MeUGT25基因确实受到Xam病菌处理的诱导。在侵染5 d后,MeUGT25基因的表达量达到最高,随后在7 d时表达量下降到正常水平,MeUGT25基因的表达量相比对照0 d最高提高9.2倍(图1)。以上结果表明,MeUGT25基因的表达会受到Xam病菌的诱导。

    图  1  MeUGT25基因在Xam处理下的表达分析
    *表示与0 d差异显著(P<0.05)。
    Figure  1.  Expression of MeUGT25 under Xam treatment
    * indicates significant difference from control (0 d) (P<0.05).

    根据MeUGT25基因的序列,本研究挑选1个291 bp的片段作为干扰片段,其两端添加的酶切位点分别为EcoRⅠ和KpnⅠ。得到扩增片段后进行测序,待测序正确后,将其连接到pTRV2载体,从而得到干扰载体pTRV2-MeUGT25。本研究采用菌液PCR和双酶切方法对构建的载体进行验证。如图2所示,图2A为成功克隆的干扰片段,图2B为酶切后的干扰载体框架,图2C为干扰载体pTRV2-MeUGT25经双酶切后的琼脂凝胶电泳图。这些验证结果表明,干扰载体pTRV2-MeUGT25构建成功。

    图  2  pTRV2-MeUGT25干扰载体构建
    A:干扰片段克隆;B:pTRV2载体酶切;C:pTRV2-MeUGT25双酶切。
    Figure  2.  Construction of pTRV2-MeUGT25 vector
    A: Cloned fragment of MeUGT25; B: digested pTRV2 vector; C: verified pTRV2-MeUGT25 vector by digestion.

    VIGS作为快速表征感兴趣基因表型的筛选技术,与传统的基因功能分析方法相比,VIGS能够在侵染植物当代对目标基因进行沉默和功能分析。本研究通过VIGS方法抑制MeUGT25基因的表达,获得3株MeUGT25基因部分沉默的阳性植株,分别命名为MeUGT25V-1、MeUGT25V-2和MeUGT25V-3。荧光定量结果显示,MeUGT25基因的表达量分别降低71%、70%和69%(图3),表明MeUGT25基因在木薯叶片中的表达量受到显著的抑制。

    图  3  叶片中MeUGT25基因被沉默后的表达水平
    *表示与对照(TRV)差异显著(P<0.05)。TRV: 对照植株;MeUGT25V-1、MeUGT25V-2、MeUGT25V-3:不同干扰植株。
    Figure  3.  Expression of MeUGT25 after VIGS
    * indicates significant difference from control (TRV) (P<0.05); TRV: control plant; MeUGT25V-1, MeUGT25V-2, and MeUGT25V-3: different silenced plants.

    为探究MeUGT25基因在木薯抗病中的功能,分别在对照叶片和阳性干扰植株叶片上接种Xam菌株。如图4所示,对照叶片和阳性干扰植株叶片在接种0 d时,细菌数量没有显著差异;而接种6 d后,MeUGT25V-2和MeUGT25V-3植株叶片上的细菌数量相比对照显著增加,而MeUGT25V-1阳性植株叶片上的细菌数与对照无显著差异。值得注意的是,从叶片的表型图(图5)可以看出,3个干扰植株叶片上的菌斑均比对照叶片明显(图5)。这些结果表明,降低木薯叶片中MeUGT25基因的表达量会显著影响叶片抵抗Xam病菌侵染的能力。

    图  4  MeUGT25基因被沉默后发病叶片中细菌数量的变化情况
    不同小写字母表示处理间差异显著(P<0.05)。
    Figure  4.  Bacteria counts in cassava leaves transformed with pTRV-MeUGT25
    Different lowercase letters indicate significant difference among treatments (P<0.05).
    图  5  MeUGT25基因被沉默后接种细菌的表型
    Figure  5.  Symptoms on Xam-infected cassava leaves

    木薯作为重要的粮食和经济作物,也是未来绿色能源的重要原料之一 [1],然而细菌性枯萎病对木薯产业造成严重威胁。该病最早在拉丁美洲被发现,并逐渐传播到世界各地。它曾经毁灭性地影响多个国家的木薯产业,也对我国的木薯产业造成严重威胁 [1, 8]。因此,解析木薯抵抗细菌性枯萎病的机制对于木薯产业具有重要意义。

    UGTs家族基因在植物的生长发育过程中起着重要作用,其功能是通过对植物激素和重要次生代谢物进行不同程度的糖基化修饰来实现的 [4]。例如,通过调节植物激素如ABA、油菜素类固醇和生长素等物质的含量,UGTs参与植物的发育过程,同时也影响植株对非生物逆境的耐受性 [10-12, 14]。此外,研究表明,UGTs也参与生物胁迫的响应 [21]。例如,缺失UGT74F1基因功能会导致植株中水杨酸水平的降低,从而使植株对病菌变得更加敏感 [26]。此外,ugt76b1突变体中UGT76B1基因的缺失可能导致茉莉酸水平的降低,使植株对特定病菌更加敏感 [21]。此外,研究还发现,通过干扰MeUGT41基因的表达会导致木薯叶片抵抗病菌侵染的能力降低 [27]。在本研究中,MeUGT25基因在叶片中的表达量降低会明显降低叶片对Xam病菌的抵抗力,说明MeUGT25基因具有正调控木薯叶片抵抗细菌性枯萎病的能力。通过序列比对分析发现,MeUGT25基因与UGT76B1/UGT74F1基因有较近的进化关系,推测MeUGT25基因可能通过调节水杨酸和茉莉酸的合成来应对Xam病菌的侵染。然而,在干扰植株MeUGT25V-1中,叶片上的细菌数量与对照叶片相比没有显著差异。类似的现象在其他研究中也有出现,例如抑制小麦中TaLCYB基因的表达,有时会观察到个别转基因阳性植株的表型与对照组相似,这可能是由于其他同源基因的补偿效应所致 [28]。本研究结果为进一步揭示MeUGT25基因在木薯抵抗细菌性枯萎病中的机制提供了基础和线索。下一步的研究可以探究过表达MeUGT25基因是否能提高木薯叶片对细菌性枯萎病的抵抗能力,并探讨水杨酸和茉莉酸的含量是否和MeUGT25基因的表达量相关。

    MeUGT25基因可以被枯萎病菌诱导表达上调,而降低木薯叶片中MeUGT25基因的表达量会降低叶片抵抗Xam病菌侵染的能力,因此推测MeUGT25基因在木薯抗枯萎病中发挥着正向调控作用。

  • 图  1   不同果袋、套袋方式浙梨6号成熟果实外观

    A:不套袋果实(CK);B:白色单层大袋果实;C:黄色单层袋果实;D:外黄内白双层袋果实;E:外黄内黑双层袋果实;F:二次套袋果实。

    Figure  1.   Mature Zheli No. 6 pears bagged in different pouches once or twice

    A: bare fruit(CK) ;B: fruit bagged in white single-layer large pouch;C: fruit bagged in yellow single-layer pouch;D: fruit bagged in outer-yellow-inner-white double-layer pouch;E: fruit bagged in outer-yellow-inner-black double-layer pouch;F: fruit bagged twice.

    图  2   不同外观类型浙梨6号的成熟果实

    A:黄绿果; B:花脸果; C:全锈果。

    Figure  2.   Different appearance types of matured Zheli No. 6 pears

    A: yellowish green fruit; B: dapple fruit; C: full-rust fruit.

    图  3   不同时期套袋浙梨6号梨果实中不同外观类型占比

    不同小写同字母表示差异显著(P < 0.05)。

    Figure  3.   Proportion of different types of Zheli No. 6 pears bagged at different times

    Data with different letters indicate significant differences at P<0.05.

    表  1   不同果袋处理浙梨6号果实的外观品质

    Table  1   Appearance of Zheli No. 6 pears bagged in different pouches

    处理
    Treatment
    L a b 果皮色泽
    Fruit peel
    color
    果点
    Dot
    果面光滑度
    Degree of
    fruit skin
    smoothness
    果锈指数
    Fruit rust
    index
    果锈位置
    Rust location
    单果质量
    Weight per
    fruit/g
    果形指数
    Fruit shape
    index
    萼端
    Calyx end/%
    全果
    Whole fruit/%
    63.42bc −6.29c 36.23a 黄绿 小、密 光滑 0.743b 55 45 820.55a 0.89a
    62.06c −6.44c 36.55a 黄绿 中、密 光滑 0.929a 0 100 733.16a 0.90a
    65.19b −7.32c 35.54a 黄绿 小、密 光滑 0.943a 0 100 729.30a 0.91a
    73.63a 6.95a 28.79c 黄白 小、密 光滑 0.971a 0 100 742.68a 0.93a
    CK 56.51d −0.16b 33.20b 绿褐相间 大、密 中等 1.000a 0 100 753.53a 0.89a
    同一列的不同字母表示经LSD多重比较差异显著(P < 0.05)。下同。
    Data with different letters on same column indicate significant differences at P<0.05 (ANOVA Fisher’s LSD test). Same for below.
    下载: 导出CSV

    表  2   不同果袋处理浙梨6号果实的内在品质

    Table  2   Eating quality of Zheli No. 6 pears bagged in different pouches

    处理
    Treatment
    可溶性
    固形物
    Total
    soluble
    solids/%
    可溶性
    总糖
    Total soluble
    sugar/(mg·g−1)
    可滴定酸
    Titratable
    acid/%
    维生素C
    Vitamin C/
    (mg·g−1)
    糖酸比
    Ratio of soluble
    sugar and
    titratable
    acid
    甜度值
    Sweetness
    value
    蔗糖
    Sucrose/
    (mg·g−1)
    葡萄糖
    Glucose/
    (mg·g−1)
    果糖
    Fructose/
    (mg·g−1)
    山梨醇
    Sorbitol/
    (mg·g−1)
    苹果酸
    Malic
    acid/
    (mg·g−1)
    柠檬酸
    Citric
    acid/
    (mg·g−1)
    奎尼酸
    Quinic
    acid/
    (mg·g−1)
    莽草酸
    Shikimic
    acid/
    (mg·g−1)
    13.34a 133.56a 0.16d 0.046b 85.12a 130.89bc 43.22a 6.89b 39.42b 34.66b 1.24e 0.63c 0.89bc 0.66d
    13.86a 132.00a 0.21c 0.065a 62.12bc 126.94c 26.10 d 10.37a 45.82a 33.48b 1.55b 0.72a 0.94b 0.78b
    13.62a 129.87a 0.19c 0.066a 68.14b 138.83a 38.94b 9.98a 45.41a 33.58b 1.50c 0.71a 0.81d 0.74c
    13.56a 135.63a 0.31a 0.068a 43.89d 137.12ab 32.57c 10.11a 47.11a 37.59a 1.45d 0.67b 0.83cd 0.64e
    CK 13.94a 140.32a 0.26b 0.068a 54.85cd 126.65c 45.67a 6.65b 34.61c 39.37a 1.66a 0.53d 1.11a 0.90a
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    表  3   不同套袋方式浙梨6号果实的外观品质

    Table  3   Appearance of Zheli No. 6 pears bagged once or twice

    处理
    Treatment
    L a b 果皮色泽
    Fruit peel color
    果点
    Dot
    果面光滑度
    Degree of
    fruit skin
    smoothness
    果锈指数
    Fruit rust
    index
    果锈位置
    Rust location
    单果质量
    Weight per
    fruit/g
    果形指数
    Fruit shape
    index
    萼端
    Calyx
    end/%
    全果
    Whole
    fruit/%
    一次套袋
    Single bagging
    63.42a −6.29b 36.23a 黄绿 小、密 光滑 0.743b 55 45 820.55a 0.89a
    二次套袋
    Twice bagging
    64.17a −5.28b 35.98a 黄绿 小、密 光滑 0.571c 85 15 778.03a 0.92a
    对照CK 56.51b −0.16a 33.20b 绿褐相间 大、密 中等 1.00a 0 100 753.53a 0.89a
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    表  4   不同套袋方式浙梨6号果实内在品质

    Table  4   Eating quality of Zheli No. 6 pears bagged once or twice

    处理
    Treatment
    可溶性
    固形物
    Total
    soluble
    solids/
    %
    可溶性
    总糖
    Total
    soluble
    sugar/
    (mg·g−1
    可滴定酸
    Titratable
    acid/%
    维生素C
    Vitamin C/
    (mg·g−1)
    糖酸比
    Ratio of
    soluble
    sugar
    and
    titratable
    acid
    甜度值
    Sweetness
    value
    蔗糖
    Sucrose/
    (mg·g−1)
    葡萄糖
    Glucose/
    (mg·g−1)
    果糖
    Fructose/
    (mg·g−1)
    山梨醇
    Sorbitol/
    (mg·g−1)
    苹果酸
    Malic
    (acid/
    mg·g−1)
    柠檬酸
    Citri
    acid/
    (mg·g−1)
    奎尼酸
    Quinic
    acid/
    (mg·g−1)
    莽草酸
    Shikimic
    acid/
    (mg·g−1)
    一次套袋
    Single bagging
    13.34a 133.56b 0.16b 0.046b 85.12a 130.89b 43.22b 6.89b 39.42b 34.66b 1.24b 0.63a 0.89b 0.66c
    二次套袋
    Twice bagging
    13.26a 147.77a 0.28a 0.063a 53.88b 138.54a 43.41b 9.19a 43.55a 31.19c 1.05c 0.45c 0.90b 0.70b
    对照CK 13.94a 140.32ab 0.26a 0.068a 54.85b 126.65b 45.67a 6.65b 34.61c 39.37a 1.66a 0.53b 1.11a 0.90a
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    表  5   不同时期套袋处理浙梨6号果实的外观品质

    Table  5   Appearance of Zheli No. 6 pears bagged at different times

    处理
    Treatment
    L a b 果点 Dot 果面光滑度
    Degree of fruit
    skin smoothness
    单果质量
    Weight per
    fruit/g
    果形指数
    Fruit shape
    index
    直径
    Diameter/mm
    密度
    Density/(个·cm−2)
    盛花后10 d 10 d after full-bloom 58.80a −1.72c 33.23a 0.89d 13.28b 光滑 607.00c 0.85a
    盛花后20 d 20 d after full-bloom 59.51a −1.34c 33.67a 1.15bc 13.39b 光滑 646.33bc 0.89a
    盛花后30 d 30 d after full-bloom 60.69a −4.81 d 34.43a 1.08c 12.36b 光滑 650.77bc 0.88a
    盛花后40 d 40 d after full-bloom 60.06a −3.74cd 34.46a 1.14bc 15.57ab 光滑 649.83bc 0.90a
    盛花后50 d 50 d after full-bloom 59.93a −3.27cd 34.10a 1.21b 14.54ab 光滑 670.75b 0.86a
    盛花后60 d 60 d after full-bloom 51.10c 8.25a 29.67c 0.93 d 17.63a 光滑 690.45ab 0.86a
    对照 CK 54.58b 3.32b 31.07b 1.42a 18.54a 中等 737.98a 0.87a
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    表  6   不同时期套袋处理浙梨6号果实的内在品质

    Table  6   Eating quality of Zheli No. 6 pears bagged at different times

    处理
    Treatment
    可溶性
    固形物
    Total
    soluble
    solids/%
    可溶性
    总糖
    Total
    soluble
    sugar/
    (mg·g−1)
    可滴
    定酸
    Titratable
    acid/%
    维生素C
    Vitamin C/
    (mg·g−1)
    糖酸比
    Ratio of
    soluble
    sugar
    and
    titratable
    acid
    甜度值
    Sweetness
    value
    蔗糖
    Sucrose/
    (mg·g−1)
    葡萄糖
    Glucose/
    (mg·g−1)
    果糖
    Fructose/
    (mg·g−1)
    山梨醇
    Sorbitol/
    (mg·g−1)
    苹果酸
    Malic
    acid/
    (mg·g−1)
    柠檬酸
    Citric
    acid/
    (mg·g−1)
    奎尼酸
    Quinic
    acid/
    (mg·g−1)
    莽草酸
    Shikimic
    acid/
    (mg·g−1)
    盛花后10 d
    10 d after full-bloom
    13.03a 96.61b 0.19a 0.19a 52.05b 133.95abc 33.63bc 12.64ab 44.73a 32.99ab 0.61cd 0.60b 0.19d 0.056de
    盛花后20 d
    20 d after full-bloom
    13.25a 108.06ab 0.17a 0.18a 62.04ab 141.65ab 41.69abc 11.08b 43.81a 38.83a 1.02a 0.70a 0.31a 0.15a
    盛花后30 d
    30 d after full-bloom
    13.43a 110.83ab 0.18a 0.23a 61.14ab 127.28bc 36.56abc 11.81b 39.83a 31.89ab 0.57d 0.47d 0.25b 0.067d
    盛花后40 d
    40 d after full-bloom
    13.38a 107.21ab 0.20a 0.19a 53.94b 143.77ab 46.53a 13.88a 43.13a 30.12b 0.97a 0.44e 0.23bc 0.065d
    盛花后50 d
    50 d after full-bloom
    13.42a 116.44a 0.19a 0.17a 62.80ab 147.96a 46.36a 12.43ab 45.73a 32.16ab 0.68c 0.51c 0.23bc 0.050e
    盛花后60 d
    60 d after full-bloom
    13.32a 109.33ab 0.17a 0.17a 62.76ab 134.99abc 44.39ab 10.83b 39.71a 33.84ab 0.88b 0.40f 0.21cd 0.078c
    对照 CK 13.80a 122.29a 0.17a 0.19a 71.68a 122.01c 32.82c 12.66ab 38.64a 31.78ab 0.84b 0.49d 0.29a 0.13b
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出版历程
  • 收稿日期:  2024-05-23
  • 修回日期:  2024-07-04
  • 网络出版日期:  2024-11-12
  • 刊出日期:  2024-08-27

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