Effects of Forage with Varied Concentrate/Roughage Ratios on Growth, Serum Biochemistry, and Immunity of Dumeng Lambs
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摘要:目的 探究日粮不同精粗比条件下杜蒙羔羊生长及健康状态，寻求杜蒙羔羊更加合理科学的饲养模式。方法 选用30只3月龄、体重（25±2.14）kg杜蒙公羔羊，随机分为3组，即低精料C30组（精粗比30∶70）、中精料C50组（精粗比50∶50）和高精料C70组（精粗比70∶30），每组10个重复。预饲期15 d，正试期60 d，分析其生长性能及血清生化指标。结果 1）生产性能结果表明：C50组和C70组全期平均日增重（ADG）与C30组相比极显著升高（P＜0.01），料重比（F/G）极显著降低（P＜0.01），C50组比C70组ADG提高了24.12%；C50组的全期平均日采食量（ADFI）极显著高于其他两组（P＜0.01）。2）营养物质表观消化率结果表明：C50和C70组粗蛋白（CP）和中性洗涤纤维（NDF）消化率分别极显著或显著高于C30组（P＜0.01或P＜0.05）；C50组酸性洗涤纤维（ADF）消化率显著高于其他两组（P＜0.05）。3）血清生化指标结果表明： C50组和C70组血清中谷丙转氨酶活性（ALT）、碱性磷酸酶活性（ALP）、白蛋白（ALB）含量、血糖（GLU）含量和直接胆红素（DBIL）含量显著或极显著高于C30组（P＜0.05或P＜0.01）。4）血清免疫指标结果表明：试验第30天时，C70组血清中免疫球蛋白A（IgA）含量极显著高于C30组（P＜0.01），而试验第60天时，C70组血清中IgA、免疫球蛋白M（IgM）含量显著低于C50组（P＜0.05），且C70组血清中白介素6（IL-6）含显著高于C30组（P＜0.05）。结论 在精粗混饲生产条件下，日粮精粗比为50∶50时更有利于杜蒙羔羊生长和保持机体健康状态。Abstract:Objective Effect of forage with varied ratios of refined concentrate and roughage on the growth and health of lambs was studied.Method Thirty 3-month-old Dumeng male lambs with body weight of (25±2.14) kg were randomly divided into groups fed with a forage of low concentrate/roughage ratio at 30/70 (C30), one with medium concentrate/roughage ratio at 50/50 (C50), and another with high ratio at 70/30 (C70). Each group had 10 replicates to be fed initially on a 15 d pre-feeding followed by a treatment period that lasted 60 d. Growth performance and serum biochemicals of the lambs were monitored during the treatment.Results (1) The average daily gain (ADG) of the lambs under C50 and C70 were significantly higher, while the feed/gain (F/G) rate significantly lower, than those of C30 (P＜0.01) with that of C50 lambs 24.12% higher than that of C70. The average daily feed intake (ADFI) of C50 group was significantly higher than those of the other two groups (P＜0.01). (2) The apparent digestibility of the lambs under C50 and C70 were extremely significantly higher (P＜0.01) on crude protein (CP) and significantly higher (P＜0.05) on neutral detergent fiber (NDF) than those under C30; while that of the animals under C50 on acid detergent fiber (ADF) significantly higher than those of the other two groups (P＜0.05). (3) The serum alanine aminotransferase (ALT), alkaline phosphatase (ALP), albumin (ALB), blood glucose (GLU), and direct bilirubin (DBIL) of the C50 and C70 group were significantly (P＜0.05) or extremely significantly (P＜0.01) higher than those of C30. (4) On the 30th day of treatment, the serum immunoglobulin A (IgA) in C70 lambs was significantly higher than that in C30 (P＜0.01). However, on the 60th day, the IgA and immunoglobulin M (IgM) in the lambs under C70 were significantly lower than those under C50 (P＜0.05) but the serum interleukin 6 (IL-6) significantly higher under C70 than under C30 (P＜0.05).Conclusion Feeding Dumont lambs with a 50/50 ratio of refined and roughage forage appeared to benefit the growth and health of the animals more than the other mixing combinations.
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银耳Tremella fuciformis Berk.，又名白木耳、雪耳，在分类学上隶属于真菌门Eumyeota、担子菌纲Basidiomyeetes、异隔担子菌亚纲Heterobasidiae、银耳目Tremellales、银耳科Tremellaeeae、银耳属Tremella[1-2]，有“菌中之冠”的美称[3]。银耳味甘、淡、性平、无毒，含有丰富的碳水化合物、蛋白质、维生素以及微量元素等营养成分[4]。银耳不但有补脾开胃的功效，能起到很好的滋阴润肺以及清肠的作用，而且能提高人体的免疫力和肿瘤患者对化疗的耐受能力[5-9]。
我国是银耳的主要生产国和出口国，销售现阶段还是以干制品为主[10]，在世界银耳生产领域处于一枝独秀的重要地位。但是新采摘的银耳通常需要经过清水浸泡，再进行烘干，过程中会造成不同程度的营养物质损失，从而造成菇农的经济损失[11-12]。迄今未见关于银耳干燥前浸泡过程中银耳损失情况的研究。本研究通过设置不同的浸泡时间，探究银耳在浸泡过程中干物质流失情况以及对流失成分进行分析，以期提出更加合理的银耳浸泡时间，尽可能地减少银耳浸泡过程中的营养流失，为在银耳干品制备过程中降低损失提供一定的理论依据。
1. 材料与方法
1.1 材料与试剂
银耳：福建省祥云生物科技发展有限公司；牛血清蛋白：翊圣生物；熊果酸：北京荣宝科技有限公司；香草醛：西格玛奥德里奇贸易有限公司；浓硫酸：兰溪旭日化工有限公司；葡萄糖、无水乙醇(分析纯)：国药集团化学试剂有限公司。
1.2 主要仪器
紫外可见分光光度计(UV-1601)：北京瑞利分析仪器公司；自动凯氏定氮仪(ATN-1100)：上海洪纪仪器设备有限公司。
1.3 试验方法
1.3.1 浸泡时间对银耳干物质流失率的影响
取新鲜银耳40朵均分成4组，分别进行未经浸泡、浸泡1 min、浸泡1 h和浸泡2 h处理，再烘干，由此计算出每组银耳干物质流失率。
X/%=[1−M×M3M1×M2]×100% 式中：X表示流失率(%)；M表示未经过浸泡组的银耳烘干前总重量(g)；M1表示未经过浸泡组的银耳烘干后的总重量(g)；M2表示经过浸泡的银耳烘干前总重量(g)；M3表示经过浸泡的银耳烘干后的总重量(g)。
1.3.2 银耳浸泡液中不同成分含量的测定
取5朵形状相似、重量相近的新鲜银耳，将每朵分成3块，每块称重后分别随机放入烧杯中，按照料液比1:10的比例加入蒸馏水。设置银耳浸泡时间为：5、10、15、25、30、40、45、50、60、90、120 min，浸泡相应时间后得上清液，抽滤，样液备用。每个试验重复3次。
(1) 多糖测定：采用苯酚-硫酸法，绘制标准曲线[13]。称取葡萄糖标准品10 g于烧杯中，加蒸馏水溶解后定溶于100 mL容量瓶中，得到葡萄糖标准液100 μg·mL-1。吸取葡萄糖标准溶液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL，置于带塞试管中，补充蒸馏水到最终体积为2 mL，振荡摇匀，分别加入配制好的0.06 g·mL-1苯酚溶液1 mL，摇匀，迅速滴加浓硫酸5 mL，摇匀静止30 min，于490 nm波长处测定吸光值。以葡萄糖含量为横坐标，吸光值为纵坐标，绘制标准曲线，得线性回归方程y=0.076x-0.0542，R2=0.9987。银耳多糖按照上述方法测定吸光度，计算多糖含量。
X/(mg⋅g−1)=m⋅V1⋅V3⋅V5M⋅V2⋅V4⋅V6 式中：X表示银耳中多糖的含量(mg·g-1)；m表示从标准曲线中查得的多糖的质量(mg)；M表示样品的质量(g)；V1表示样品提取液的体积(mL)；V2表示沉淀粗多糖所用样品提取液的体积(mL)；V3表示粗多糖总体积(mL)；V4表示沉淀葡萄糖所用粗多糖溶液的体积(mL)；V5表示样品测定液的体积(mL)；V6表示测定样品测定液的体积(mL)。
(2) 粗蛋白的测定：采用考马斯亮蓝法进行蛋白质含量的测定[14]。称取10 mg牛血清蛋白标准品，溶解定容到容量瓶中，作为标准液备用。吸取0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mL标准溶液于7支10 mL干燥试管中，分别加入蒸馏水至1 mL，再加入显色剂5 mL，摇匀，室温静置5 min后，以空白溶液为参比对照，在595 nm波长下测定吸光度。以标准品的含量(mg)为横坐标，吸光度为纵坐标绘制标准曲线，求得回归方程为y=0.063x+0.0497，R2=0.9980。提取液中蛋白质含量由回归方程计算可得。
X/(mg⋅g−1)=m×V′M×V′ 式中：X表示提取液中蛋白质的含量(mg·g-1)；m表示查得的蛋白质(mg)；M表示试样质量(g)；V表示提取液总体积(mL)；V′表示测定时提取液体积(mL)。
(3) 总三萜的测定：取100 mg熊果酸标准品用甲醇溶液定容至500 mL。吸取熊果酸标准品溶液0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mL到6根具塞试管中，分别加入甲醇补充至0.5 mL。60℃水浴蒸干后，分别加入0.4 mL的5%香草醛-冰醋酸(现配现用)和1 mL的高氯酸，摇匀后，60℃水浴15 min。待冷却至室温，再加入5 mL的冰醋酸，摇匀后经室温静置0.5 h，在波长为546 nm的条件下进行吸光度检测[15]。以熊果酸含量为横坐标，吸光值为纵坐标，得到线性回归方程为y=1.783x+0.0489，R2=0.9935。通过标准曲线算出各样品中三萜的含量。
X/(mg⋅g−1)=A1×V1m×V2×1000 式中：X表示样品中三萜的含量(mg·g-1)；A1表示样品测定中比色相当于熊果酸的量(μg)；V1表示样品测定液体积(mL)；m表示样品质量(g)；V2表示测定用样品测定液的体积(mL)。
(4) 粗脂肪的测定：称取10 g液体样品置于50 mL大试管中，加入10 mL盐酸溶液。而后，将加入样品的试管置于70℃水浴锅中，每隔10 min，搅拌1次，直到试管中的试样消化完全为止。取出消化完全的试管，加入10 mL乙醇溶液，充分混合。冷却后将试管中的混合物倒入100 mL具塞试管中，用25 mL乙醚分次清洗试管，将清洗液一起倒入具塞试管，振摇1 min，打开试管塞，释放管内气体，复塞，静置12 min后打开试管塞，用石油醚-乙醚的等量混合液冲洗试管塞以及试管口附着的脂肪。再静置15 min，待上层液体清晰后，吸取上清液到干燥并称量的锥形瓶中，置于水浴锅上蒸干，放在(100±5)℃的烘干箱中干燥2 h，直至烘干至恒量[16]。
X/(mg⋅g−1)=m1−m0m 式中：X表示样品中三萜的含量(mg·g-1)；m1表示锥形瓶和粗脂肪的质量(mg)；m0表示锥形瓶的质量(mg)；m表示样品的质量(g)。
2. 结果与分析
2.1 干物质流失分析
不同浸泡时间下，各组银耳的干物质流失率有所不同。由图 1可知，未经浸泡和浸泡1 min的银耳干物质流失率分别为0和2.05%，两者不存在显著性差异(P>0.05)，而浸泡1 h和浸泡2 h的干物质流失率分别为7.68%和8.18%，两者之间也不存在显著性差异(P>0.05)。但浸泡1 h和浸泡2 h对于未经浸泡和浸泡1 min之间都存在极显著差异(P < 0.01)。说明，在浸泡1 h后，银耳的干物质流失较为严重。
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图 3 不同浸泡时间下银耳中多糖析出比例情况Figure 3. Leaching of polysaccharides in T. fuciformis soaked for varied time durations![]()
图 4 不同浸泡时间下银耳中粗蛋白的析出比例情况Figure 4. Leaching of crude protein in T. fuciformis soaked for varied time durations![]()
图 5 不同浸泡时间下银耳中三萜的析出比例情况Figure 5. Leaching of triterpene in T. fuciformis soaked for varied time durations![]()
图 6 不同浸泡时间下银耳中粗脂肪的析出比例情况Figure 6. Leaching of crude fat in T. fuciformis soaked for varied time durations2.2 银耳烘干前后的表观比较
银耳经过不同浸泡时间处理后，烘干后的银耳表观比较见图 2。从图中可以看出，银耳在烘干前后的颜色发生了较为明显的变化。烘干前，银耳的颜色大致为浅黄色，而烘干后，浅黄色变为金黄色。其中，未经浸泡的银耳烘干后的颜色比经过浸泡的颜色深，出现焦黄的颜色，未经浸泡的银耳烘干后的颜色鲜艳。同时未经浸泡的银耳烘干后，银耳子实体耳片较为减缩，整朵银耳呈现皱缩焦黄的状态。而经过浸泡的银耳烘干后，子实体耳片相对更加的展开，银耳朵型相对更大，外观更为美观。且从图 2可以看出来，在浸泡1 h以后(包括1 h)，银耳的外观相对于其他两组更美观。
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图 2 不同浸泡时间处理下银耳烘干的前后比较注：1~4组分别表示未经浸泡组、浸泡1 min组、浸泡1 h组和浸泡2 h组的银耳。Figure 2. Photos of T. fuciformis soaked for varied time durations before and after dehydration2.3 不同浸泡时间对银耳浸出液中多糖的影响
银耳经过不同浸泡时间处理后，银耳多糖的析出情况见图 3。随着浸泡时间的增加，多糖的析出量也随之增加。浸泡2 h的银耳多糖析出率最高，达到(2.7128±0.7427)mg·g-1，而浸泡5 min的银耳多糖析出率最低，只有(1.0926±0.1270)mg·g-1。其中，浸泡2 h的多糖析出量与浸泡时间≤1 h各组之间均存在极显著差异(P < 0.01)，与浸泡1.5 h之间存在显著差异(P < 0.05)。而浸泡1.5 h与浸泡5 min的存在极显著差异(P < 0.01)，与浸泡时间≤1h各组(除去浸泡5 min组)之间不存在显著差异(P>0.05)。且在浸泡1.5 h后，多糖的析出量出现了明显的增加，可见以浸泡时间1.5 h为分界线，浸泡时间 < 1.5 h时，多糖的析出呈现增加趋势，但增长趋势不明显，而当浸泡时间>1.5 h，多糖的析出呈现了明显的增长趋势，损失现象较为严重。
2.4 不同浸泡时间对银耳浸出液中粗蛋白的影响
银耳经过不同浸泡时间处理后，粗蛋白的析出情况见图 4。随着浸泡时间的增加，粗蛋白的析出量也随之增加。经浸泡2 h的银耳粗蛋白析出率最高，达到(0.0063±0.0011)mg·g-1，而浸泡5 min的析出率最低，达到(0.0027±0.0012)mg·g-1。其中，浸泡时间为0.5~2.0 h不存在极显著差异(P >0.05)，浸泡2 h与浸泡时间≤30 min各组之间均存在极显著差异(P < 0.01)。在浸泡2 h后，粗蛋白的析出相对于30 min之前已有了明显的增加，流失较为严重。
2.5 不同浸泡时间对银耳浸出液中总三萜的影响
不同浸泡时间下每克银耳的三萜析出情况见图 5，在浸泡时间5~45 min，未检测到三萜析出，可能是仪器的限量。在浸泡50 min后，出现三萜的析出，但浸泡50~120 min的三萜析出波动不大，趋于稳定。表明，在银耳的浸泡过程中，在浸泡50 min后会出现三萜的析出，且随着浸泡时间的增加，三萜的析出量几乎趋于稳定。不同浸泡时间下银耳的三萜析出值均未超过0.01 mg·g-1。
2.6 不同浸泡时间对银耳浸出液中粗脂肪的影响
不同浸泡时间下每克银耳的粗脂肪析出情况见图 6。随着浸泡时间的增加，粗脂肪的析出量也随之增加。经浸泡2 h的银耳粗脂肪析出率最高，达到(0.1632±0.0421)mg·g-1，而浸泡5 min的析出率最低，只有(0.0896±0.0196)mg·g-1。其中，浸泡时间≤1 h的各组间，粗脂肪的析出比例之间不存在显著差异(P>0.05)，浸泡1.5 h与浸泡时间 < 1 h的各组间均存在显著性差异(P < 0.05)，而浸泡1.5 h和浸泡2 h不存在显著差异(P>0.05)。可见，银耳粗脂肪在浸泡1.5 h后已开始产生严重流失。
3. 讨论与结论
银耳采摘后，经浸泡、漂洗再进行烘干，浸泡的主要目的是洗去杂质，并让银耳耳片舒展，但是对于浸泡时间、浸泡过程中造成的哪些成分的流失均未曾明晰。本研究对经浸泡处理的银耳干物质流失率进行分析，发现浸泡1 h及以后干物质流失较严重。经浸泡后的银耳烘干后，菇朵色泽、大小以及子实体的展开程度等较未经浸泡的银耳更为美观，且经浸泡1 h的银耳烘干后的外形保持的最好。
对银耳浸泡液过程中不同营养成分的测定分析可知，随着浸泡时间的增加，银耳多糖、粗蛋白、总三萜以及粗脂肪均产生了不同程度的流失。浸泡2 h，多糖、粗蛋白、总三萜以及粗脂肪的流失都达到了最大值，分别为(2.7128±0.7427)、(0.0063±0.0011)、(0.0063±0.011)、(0.1632±0.0421)mg·g-1。并且多糖流失在浸泡1.5 h后较为严重；粗蛋白的流失在浸泡2 h时便较为严重；而总三萜流失约在浸泡50 min的时候发生；粗脂肪流失在浸泡1.5 h时就较为严重。综上所述，在烘干前的银耳的浸泡工艺中，将浸泡时间控制在1.0~1.5 h，能最大程度减少银耳浸泡过程中的营养流失，保持较好外观。从浸泡液成分来看，银耳流失的主要成分为多糖，这从理论上解释了银耳浸泡前后的黏性差异。
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表 1 基础日粮组成及营养水平（干物质基础）
Table 1 Composition and nutrition level of basal diet (on dry matter basis)
（单位：%） 项目
Items日粮组成
Diet composition项目
Items营养成分
Nutritional ingredientC30组
Group C30C50组
Group C50C70组
Group C70C30组
Group C30C50组
Group C50C70组
Group C70羊草 Leymus chinensis 70.00 50.00 30.00 代谢能 ME（MJ·kg−1）② 8.86 9.53 10.20 玉米 Corn 27.10 36.10 52.00 粗蛋白 CP 11.45 14.17 14.45 豆粕 Soybean meal 2.00 12.00 15.20 钙 Ca 0.77 0.77 0.71 石粉 Limestone 0.10 0.60 1.00 磷 P 0.38 0.38 0.37 磷酸氢钙CaHPO4 0.10 0.10 0.10 中性洗涤纤维 NDF 41.33 33.18 25.03 食盐 NaCl 0.50 0.50 0.50 酸性洗涤纤维 ADF 28.97 22.36 15.37 预混料 Premix① 0.20 0.20 0.20 非结构性碳水化合物 NSC 37.5 43.6 49.9 小苏打 NaHCO3 0.00 0.50 1.00 合计 Total 100.00 100.00 100.00 ①预混料为每千克日粮提供：Fe 25 mg，Zn 35 mg，Cu 9 mg，Co 0.1 mg，I 0.9 mg，Se 0.25 mg，Mn 19.5 mg，烟酸60 mg，VE 15 IU，VA 3 000 IU，VD3 1 000 IU。②代谢能为计算值（参考NY/T 816—2004中的中国肉羊常用饲料成分及营养价值表的原料有效能值计算配方代谢能值），其余营养指标均为实测值。
① Premix provided nutrients per kg of forage on Fe at 25 mg, Zn at 35 mg, Cu at 9 mg, Co at 0.1 mg, I at 0.9 mg, Se at 0.25 mg, Mn at 19.5 mg, nicotinic acid at 60 mg, VE at 15 IU, VA at 3 000 IU, VD3 at 1 000 IU. ② Metabolizable energy was based on NY/T 816—2004 formula for calculating effective energy of raw materials in common feed components for meat sheep in China; other nutritional indices were measured values.
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表 2 日粮不同精粗比对羔羊生长性能的影响
Table 2 Effect of varied concentrate/roughage ratios of forage on growth of lambs
项目
Items试验期
Test period/d组别 Groups C30组
Group C30C50组
Group C50C70组
Group C70体重 BW/kg 0 24.81±3.29 Aa 25.08±1.68 Aa 25.11±1.44 Aa 30 27.66±3.48 Aa 30.35±2.37 Aa 29.82±3.08 Aa 60 31.16±4.07 Bb 37.51±3.22 Aa 35.51±2.79 Aa 阶段日增重 SDG/（g·d−1） 0–30 95.24±23.06 Bb 156.33±38.68 Aa 160.56±40.05 Aa 30–60 118.00±28.73 Bb 236.11±58.53 Aa 185.97±43.28 Aa 平均日增重 ADG（g·d−1） 0–60 106.62±27.03 Bb 206.82±39.34 Aa 166.63±44.27 Aa 日均采食量 ADFI（kg·d−1） 0–30 0.87±0.06 Ab 1.02±0.08 Aa 0.90±0.01 Ab 30–60 1.17±0.09 Bb 1.46±0.12 Aa 1.12±0.01 Bb 0–60 1.03±0.07 Bb 1.24±0.10 Aa 1.01±0.01 Bb 料重比 F/G 0–60 9.66±1.22 Aa 6.01±0.93 Bb 6.06±1.53 Bb 同行数据后不同大、小写字母表示差异极显著（P ＜ 0.01）或显著（P ＜ 0.05），相同小写字母表示差异不显著（P ＞ 0.05）。下表同。
In the same row, values with different uppercase or lowercase letters mean extremely significant difference (P ＜ 0.01) or significant difference (P ＜ 0.05). The same lowercase letter indicates no significant difference (P ＞ 0.05). The same as below.
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表 3 日粮不同精粗比对羔羊营养物质表观消化率的影响
Table 3 Effect of varied concentrate/roughage ratios of forage on apparent nutrient digestibility of lambs （单位：%）
项目
Items组别 Groups C30组
Group C30C50组
Group C50C70组
Group C70干物质 DM 86.25±3.11 Aa 89.48±3.45 Aa 91.18±1.64 Aa 粗蛋白质 CP 63.36±4.74 Bb 81.12±4.74 Aa 77.98±1.60 Aa 中性洗涤纤维 NDF 52.09±9.51 Ab 71.97±7.93 Aa 66.30±2.52 Aa 酸性洗涤纤维 ADF 47.11±5.59 Ab 69.54±8.66 Aa 54.02±1.29 Ab
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表 4 日粮不同精粗比对羔羊血清生化指标的影响
Table 4 Effects of varied concentrate/roughage ratios of forage on serum biochemical indices of lambs
项目
Items试验期
Test period/d组别 Groups C30组
Group C30C50组
Group C50C70组
Group C70谷丙转氨酶活性 ALT/（U·L−1） 30 7.19±0.96 Bb 11.92±1.31 Aa 12.19±2.50 Aa 60 7.73±1.10 Bb 13.77±1.33 Aa 12.62±2.25 Aa 谷草转氨酶活性 AST/（U·L−1） 30 87.30±9.64 Aa 99.54±14.94 Aa 89.95±13.29 Aa 60 90.20±8.74 Ab 110.50±8.40 Aa 96.23±9.72 Ab 碱性磷酸酶活性 ALP/（U·L−1） 30 135.35±12.30 Bb 247.90±8.76 Aa 237.46±25.69 Aa 60 282.65±24.67 ABab 352.75±42.59 Aa 258.71±23.24 Bb 总蛋白 TP/（g·L−1） 30 54.09±3.13 Bb 61.16±2.56 Aa 61.51±5.65 Aa 60 70.29±4.13 Aa 70.19±5.34 Aa 60.29±3.64 Bb 白蛋白 ALB/（g·L−1） 30 25.43±3.95 Ab 30.33±3.31 Aa 31.18±2.92 Aa 60 28.91±3.15 Ab 34.99±3.61 Aa 32.73±3.75 Aab 血糖 GLU/（mmol·mL−1） 30 3.24±0.26 Bb 4.07±0.69 Aa 3.96±0.34 Aa 60 3.72±0.14 Bb 4.93±0.13 Aa 4.71±0.46 Aa 尿素氮 BUN/（mmol·mL−1） 30 5.86±1.29 Aa 6.69±0.605 Aa 6.97±1.29 Aa 60 5.33±0.35 Bb 6.66±0.68 Aa 6.86±0.35 Aa 甘油三酯 TG/（mmol·L−1） 30 0.44±0.04 Aa 0.45±0.04 Aa 0.49±0.04 Aa 60 0.47±0.10 Aa 0.48±0.08 Aa 0.43±0.11 Aa 胆固醇 TCHO/（mmol·L−1） 30 1.19±0.35 Aa 1.54±0.30 Aa 1.41±0.44 Aa 60 1.38±0.33 Aa 1.59±0.15 Aa 1.53±0.16 Aa 总胆红素 TBIL/（μmol·L−1） 30 11.68±0.53 Aa 11.358±1.43 Aa 10.98±0.97 Aa 60 9.43±0.33 Aa 9.71±0.53 Aa 9.42±0.49 Aa 直接胆红素 DBIL/（μmol·L−1） 30 0.88±0.15 Aab 1.18±0.58 Aa 0.59±0.18 Ab 60 1.01±0.09 Bb 0.95±0.14 Bb 1.32±0.18 Aa
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表 5 日粮不同精粗比对羔羊血清免疫指标的影响
Table 5 Effects of varied concentrate/roughage ratios of forage on serum immunity indices of lambs
项目
Items试验期
Test period/d组别 Groups C30组
Group C30C50组
Group C50C70组
Group C70免疫球蛋白Ａ IgA（μg·mL−1） 30 8.81±0.43 Bb 10.13±0.91 ABab 12.17±1.60 Aa 60 8.41±0.51 Ab 10.31±1.46 Aa 8.27±0.81 Ab 免疫球蛋白M IgM（μg·mL−1） 30 11.90±1.15 Aa 11.37±0.79 Aa 11.92±0.44 Aa 60 11.82±0.52 Aab 12.34±1.02 Aa 10.43±0.48 Ab 免疫球蛋白G IgG（μg·mL−1） 30 10.95±1.02 Aa 10.98±0.51 Aa 10.99±1.31 Aa 60 10.25±0.32 Aa 11.11±0.60 Aa 10.18±0.80 Aa 干扰素 INF（pg·mL−1） 30 39.27±3.39 Aa 42.26±1.68 Aa 46.47±3.48 Aa 60 47.30±8.89 Aa 43.72±2.71 Aa 42.75±3.90 Aa 肿瘤坏死因子-α TNF-α（pg·mL−1） 30 91.45±2.29 Aa 95.62±6.54 Aa 105.19±6.24 Aa 60 90.61±3.23 Ab 95.11±7.12 Ab 112.88±8.95 Aa 白介素-1 IL-1（pg·mL−1） 30 94.02±8.61 Aa 95.75±8.55 Aa 91.29±9.91 Aa 60 93.68±4.03 Aa 97.57±15.54 Aa 92.74±5.85 Aa 白介素-6 IL-6（pg·mL−1） 30 42.53±3.87 Aa 45.27±4.49 Aa 48.34±4.37 Aa 60 41.48±2.55 Ab 45.16±3.37 Aab 58.73±11.14 Aa
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