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饥饿和不同开口饵料对大刺鳅仔鱼生长的影响

钟全福

钟全福. 饥饿和不同开口饵料对大刺鳅仔鱼生长的影响 [J]. 福建农业学报，2019，34（12）：1411−1418.. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2019.12.008
引用本文: 钟全福. 饥饿和不同开口饵料对大刺鳅仔鱼生长的影响 [J]. 福建农业学报，2019，34（12）：1411−1418.. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2019.12.008
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ZHONG Q F. Effects of Starvation and Starting Forages on Growth of Mastacembelue armatus Larvae [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences，2019，34（12）：1411−1418.. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2019.12.008
Citation: ZHONG Q F. Effects of Starvation and Starting Forages on Growth of Mastacembelue armatus Larvae [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences，2019，34（12）：1411−1418.. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2019.12.008
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饥饿和不同开口饵料对大刺鳅仔鱼生长的影响

  • 福建省淡水水产研究所，福建　福州　350002

基金项目: 福建省科技计划公益类专项（2015R1002-1、2016R1002-1、2017R1002-2）
详细信息
    作者简介:

    钟全福（1964−），男，硕士，副研究员，主要从事水产养殖及病害防控（E-mail：zhongquanfu@126.com）

  • 中图分类号: S 965

Effects of Starvation and Starting Forages on Growth of Mastacembelue armatus Larvae

  • Freshwater Fisheries Research Institute of Fujian Province, Fuzhou, Fujian　350002, China

摘要

    摘要
  • 摘要:
      目的  研究饥饿胁迫和不同开口饵料对大刺鳅仔鱼摄食、生长和成活率的影响，为大刺鳅早期苗种培育技术的改进提供参考依据。
      方法  采用实验生态学方法，测定饥饿对初孵仔鱼卵黄囊、油球的吸收和死亡不可逆点（PNR）；选用枝角类、丰年虫无节幼体、蛋黄、虾奶粉和A#鱼苗开口料作为大刺鳅仔鱼开口饵料，投喂24 d，分析不同开口饵料对大刺鳅仔鱼生长的影响。
      结果  在水温（27.0±1.5）℃的条件下，仔鱼6日龄开口摄食，初次摄食率达100%，PNR发生在14～15日龄，其摄食能力和饥饿耐受性相对较强，饥饿延缓了仔鱼对卵黄囊和油球的吸收；仔鱼能够摄食枝角类和丰年虫无节幼体等活饵，投喂1 d后的开口摄食率达100%，且具有较快的生长速度和较高的成活率；而仔鱼不摄食蛋黄、虾奶粉和A#鱼苗开口料等人工饵料，其生长、成活率与饥饿组无差异（P＞0.05）。
      结论  枝角类和丰年虫无节幼体是大刺鳅仔鱼适宜的开口饵料。
    Abstract:
      Objective  Effects of starvation stress and different initial starting forages on the feeding, growth and survival rate of Mastacembelue armatus larvae were studied with a reference to the aquaculture.
      Method  Absorptions on yolk sac and fat globules as well as the point of no return (PNR) of starved larvae were observed by methods of experimental ecology. Eel larvae fed with either freshwater cladocera, nauplius of brine shrimp, egg yolk, crustacean powder or prepared Larvstart-A formulation for 24 d were also under continuous observations．
      Result  The feeding started on the eel larvae at 6-day-old in (27.0±1.5)℃water with an initial feeding rate of 100%. The PNR of starved larvae occurred between 14-d and 15-d of age. Starvation delayed the absorptions on yolk sac and fat globules by the larvae. The consumption on live freshwater cladocera and shrimp nauplius began one day after feeding with 100% feeding rate, and followed by rapid growth with a high survival rate. There was no significant difference on the growth and survival rate between the starved larvae and those fed on the artificial forages such as egg yolk, crustacean powder or Larvstart-A (P＞0.05), which were could not be consumed.
      Conclusion  It appeared that the ideal starting diet for M. armatus larvae would be the freshwater cladocera and brine shrimp nauplius.
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  • 0.   引言

    【研究意义】双孢蘑菇Agaricus bisporus又名蘑菇、白蘑菇、洋蘑菇等，属于担子菌门、担子菌纲、伞菌科、伞菌目、蘑菇属，是一种世界性栽培和消费的食药用菌[1-4]。闽南地区是国内双孢蘑菇生产的主产区[5]，截至目前当地双孢蘑菇栽培仍以农户个体式的季节性生产为主，栽培菌株包括As2796、W192、福蘑38等，均是福建省农业科学院食用菌研究所选育品种；2010年前后陆续有人尝试利用空调等温控措施反季节栽培双孢蘑菇，目前工厂化生产双孢蘑菇运行较好的企业包括福建金明食品有限公司、漳州市新发生物科技有限公司、漳州市九冬蘑菇产业园等，栽培菌株几乎都是W192。尤其对工厂化生产企业，生产品种单一存在一定经营风险。未来双孢蘑菇生产的发展趋势必然是工厂化周年生产。随着市场的发展，对多样化、高品质的双孢蘑菇需求日益旺盛，亟需更多优良的双孢蘑菇品种。杂交育种是现代食用菌育种的常规手段, 也是目前较有效的育种方法[6-9]。杂交育种成功一个非常重要的关键因素是选择合适的亲本[10-13]。因此，收集拟用于育种的双孢蘑菇品种，评价其生物学性状，分析其遗传背景，可为后期的杂交育种亲本筛选提供依据。【前人研究进展】拮抗反应是体细胞不亲和性的具体表现[14]，可用于食用菌遗传特异性的鉴定，日本的食用菌品种登记制度也将其列为一个重要指标[15]。通过拮抗反应判断菌株间的亲缘关系，操作方便，结果也较直观、易辨认，但也存在一些缺陷，如不容易区分遗传背景近似的菌株[16-17]，而且观察拮抗线时存在主观因素，因此鉴定菌株时采用拮抗反应需结合分子标记等方法。近年来，已陆续有学者利用分子标记技术对双孢蘑菇种质资源进行分类鉴定、辅助育种。王翠等[18]通过SRAP等3种分子标记，结合农艺性状的表型，表明特定标记与双孢蘑菇产、质量性状具有明显的关联性。林媛等[19]利用RAPD标记对40个双孢蘑菇品种进行亲缘关系鉴定，王金斌等[20]采用SSR分子标记鉴定了双孢蘑菇栽培菌株，王新新等[21]采用SSR标记对国内外不同来源的双孢蘑菇种质建立了分子身份证，顾敏等[22]对31份As2796的单孢分离株和8份代表性双孢蘑菇栽培菌株进行遗传多样性研究。【本研究切入点】闽南地区双孢蘑菇栽培菌株较单一，本研究以不同途径引进的9个双孢蘑菇菌株为试验材料，利用体细胞不亲和性试验和SSR分子标记对其进行亲缘关系的探讨，旨在为进一步收集保护双孢蘑菇种质资源、杂交亲本选择等提供理论依据和技术支撑。【拟解决的关键问题】本研究采用体细胞不亲和性试验和SSR分子标记相结合对收集的9个双孢蘑菇菌株进行鉴定与分析，以期更准确更科学鉴定收集的双孢蘑菇菌株，明确其亲缘关系，为后续的杂交育种亲本选择等研究工作奠定基础。

    1.   材料与方法

    1.1   试验材料

    供试双孢蘑菇菌株具体见表1。

    表  1  供试的双孢蘑菇菌株编号
    Table  1.  Sample codes for A. bisporus germplasms
    编号
    No.    		菌株名称
    Strain    		来源
    Origin
    1 As2796 漳州市农科所
    2 W2000 福建省农科院
    3 W192 福建省农科院
    4 福蘑38 福建省农科院
    5 福蘑52 福建省农科院
    6 福蘑58 福建省农科院
    7 901 制种户
    8 A15 制种户
    9 HK 香港
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    1.2   试验试剂

    DNA提取试剂盒、琼脂糖H、SSR引物等由生工生物工程（上海）股份有限公司提供；6×DNA Loading Dye、DNA Ladder Mix（100-3000 bp）、POP-7TM Polymer、HiDiFormamide等购自ThermoFisher。

    1.3   供试培养基

    100 g马铃薯+60 g双孢蘑菇二次发酵晒干草粪料+20 g葡萄糖+18 g琼脂。

    1.4   试验方法

    1.4.1   培养基制作

    将草粪料和去皮、切块的马铃薯分别放入锅中，分别加水0.5 L，在加热器上加热至沸腾，维持约20~30 min，用2层纱布趁热在量杯上过滤，滤液待用；将2种滤液混合，小火加热，逐步加入糖和琼脂，混匀，水补足至1 L，分装，121 ℃高压蒸汽灭菌20 min。

    1.4.2   体细胞不亲和性试验

    体细胞不亲和性试验参考文献[14]的方法进行。

    1.4.3   供试菌株DNA提取

    采用Ezup 柱式真菌基因组DNA抽屉试剂盒提取DNA。

    1.4.4   PCR反应体系与条件

    参考文献[21-23]，选用12个SSR引物对供试菌株进行扩增。引物信息具体见表2，PCR反应体系组成：10 mmol·L−1 dNTPs 0.4 μL，5 U Taq酶0.3 μL，100 ng DNA 1.0 μL，10 μmol·L−1的上、下游引物各 1 μL，Taq Buffer（含MgCl2）2.5 μL，加ddH2O 至 25 μL。PCR扩增程序为：95 ℃预变性3 min：94 ℃变性30 s，60 ℃退火30 s，72 ℃延伸30 s，共10个循环；94 ℃变性30 s，55 ℃退火30 s，72 ℃延伸30 s，共35个循环；72 ℃延伸8 min，4 ℃ 保存。

    表  2  供试菌株鉴定所用SSR引物
    Table  2.  SSR primers for variety identification
    引物名
    Primer    		序列（5′ to 3′）　　
    Sequence（5′ to 3′）　　    		5′端修饰
    5′end modification    		重复基序
    Repeat motifs    		片段大小/bp
    Fragment size    		退火温度/℃
    Annealing temperature
    AbSSR005-F CTCTGGGATATGGACGAGGA 5′6-FAM （GATGAG）6 118 56
    AbSSR013-F GACTGCCTGATTGACGGATT 5′HEX （TA）6 162 57
    AbSSR015-F CTCGAGTCGACGAAGGAAAC 5′HEX （GA）7 238 58
    AbSSR016-F TGTCTGGTTTTGCTCACGTC 5′HEX （TC）12 242 55
    AbSSR018-F TGGCTCTTTACAGCCTTGGT 5′6-FAM （CAT）6 122 55
    AbSSR084-F CGACCCATCATCAACTTCCT 5′HEX （GAA）6 234 59
    AbSSR6-F ACCACATTCTGGAAAACGAA 5′HEX （GCT）8 181 55
    AbSSR36-F CGTTGATGGAGTTCACTGAG 5′HEX （GAAG）4（GAAAAG）（GAAG） 148 58
    L11-F ATAAAAAAGCATAATCACAAATG 5′6-FAM （TC）13 228 50
    L15-F GCAGGTCCAGTGTGAACGG 5′6-FAM （TCC）8 192 57
    L17-F ATCCAATTCACCAACCAGC 5′6-FAM （A）11gagaataagaaattgaaaattg（A）16 186 52
    L23-F CTTTTCAGGGGAAGACAACG 5′6-FAM （GTG）7 174 55
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    1.4.5   电泳检测和 STR检测

    将扩增好的PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳（2 μL样品+6 μL溴酚蓝），300 V电压下12 min，获取鉴定胶图，通过胶图确定模板浓度，加水稀释到毛细管电泳所需浓度，按照相关流程进行STR检测。

    1.5   数据分析

    体细胞不亲和性试验结果的判断参照NY/T1845-2010。使用Gene mapper4.1软件分析SSR数据，用MVSP软件进行聚类分析，并形成供试菌株的遗传聚类图。

    2.   结果与分析

    2.1   供试菌株的体细胞不亲和性分析

    供试菌株间的拮抗反应存在一定差异，如图1所示。福蘑52、901、As2796等3个菌株间的拮抗反应明显，表现为菌丝隆起。W192和W2000无拮抗反应，这2个菌株与福蘑52拮抗反应明显，表现为拮抗线。福蘑58和W2000无拮抗反应，这2个菌株与901拮抗反应明显，表现为沟状。

    图  1  供试菌株拮抗类型
    注：І-拮抗线图谱，ІІ- 沟状拮抗图谱，ІІІ-隆起拮抗图谱
    Figure  1.  Types of antagonistic germplasms
    Note: І-Uplift antagonistic map; ІІ-Antagonistic line map; ІІІ-Groove antagonistic map.
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    根据体细胞不亲和性试验结果，拮抗反应具体结果见表3。可以看出，901与A15之间没有拮抗线，但与其他菌株均存在较明显的拮抗线，分为一组；HK、福蘑52两两之间及与其他菌株之间均有较明显拮抗反应，这2个菌株的亲缘关系可能较远，HK分为一组，福蘑52分为另外一组；W192、W2000、As2796、福蘑58两两之间没有明显拮抗线，初步认为这些菌株之间亲缘关系较近，分为一组；As2796与W192等没有明显拮抗线，但菌丝明显不同，单独分为一组。因此，通过体细胞不亲和性试验可以初步将供试菌株分成 5 组。

    表  3  供试菌株间的拮抗反应情况
    Table  3.  Antagonistic reactions among tested germplasms
    菌株
    Strain    		As2796
    As2796    		W2000
    W2000    		W19
    2W192    		福蘑38
    Fomo 38    		福蘑52
    Fomo 52    		福蘑58
    Fomo 58    		901A15HK
    As2796 As2796−
    W2000 W2000−−
    W192 W192−−−
    福蘑38 Fomo 38−−−−
    福蘑52 Fomo 52++++−
    福蘑58 Fomo 58−−+−+−
    901++++++−
    A15++++++−−
    HK++++++++−
    注：‘+’表示有拮抗性；‘−’表示无拮抗
    Note: + presence of antagonism; − absence of antagonism.
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    2.2   供试菌株遗传相似系数分析

    遗传相似系数是表示群体或个体间相似程度的度量值，相似系数越大，样本的遗传关系越近，反之则越远。本研究结果表明，9个供试菌株的遗传相似系数变幅较大（0.432～0.905），平均值为0.6721；其中W192与福蘑38、W2000遗传相似系数最大，表明这3个菌株在这9个引进菌株群体中的亲缘关系最近；而W192与901遗传相似系数最小，表明这两个菌株的亲缘关系最远。W192、W2000、福蘑58、福蘑38、As2796之间的遗传相似系数均≥0.8，远大于平均值，表明这几个菌株间的亲缘关系较近；从遗传相似系数数值分布可以看出（表4），遗传相似系数≥0.9占比8.3%，遗传相似系数≤0.5占比11.1%，遗传相似系数0.8～0.89、0.7-0.79、0.6-0.69、0.5-0.59占比各约20%，表明这9个菌株间具有一定的遗传多样性，遗传丰富度较高。

    表  4  相似性系数
    Table  4.  List of similarity coefficients
    菌株
    Strain    		福蘑38
    Fomo 38    		福蘑52
    Fomo 52    		福蘑58
    Fomo 58    		901A15As2796HKW192W2000
    福蘑38 Fomo 381
    福蘑52 Fomo 520.6151
    福蘑58 Fomo 580.90.5951
    9010.5410.5880.6291
    A150.4620.7220.4860.7651
    As27960.8210.6670.8650.5290.5561
    HK0.5260.6860.50.6670.7430.5711
    W1920.9050.7180.80.4320.5640.8210.6321
    W20000.810.7690.80.4860.6150.8210.6840.9051
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    2.3   亲缘关系分析

    如图2所示，结合相似性系数矩阵表，以相似性系数0.76为阈值，可将供试菌株分成4个类群，第一类群只有一个样本HK；第二类群有2个样本A15与901；第三类群只有一个样本福蘑52；第四类群最多，有5个样本，其中W2000，W192和福蘑38在相似性为86%的地方聚为一类，其中W192和福蘑38的相似性有91%；样本AS2796和福蘑58相似性只有87%。

    图  2  供试双孢蘑菇菌株SSR分子标记聚类图
    Figure  2.  SSR-based dendrogram of A. bisporus germplasms
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    3.   讨论与结论

    形态标记是人们最早利用的遗传标记类型[24]。但对食用菌等大型真菌而言，其子实体表型受外部环境因素影响大，因此单纯借助形态学指标区分菌株间亲缘关系难度较大。通过体细胞不亲和性试验可以初步判断菌株间的亲缘关系。本试验的拮抗反应较明显，如HK、福蘑52两两之间及与其他菌株之间的拮抗反应均较明显，说明这2个菌株的亲缘关系较远；As2796、W192、W2000、As2796、福蘑58两两之间没有拮抗反应，说明这些菌株之间的亲缘关系较近；901与A15两个菌株均由国外育种公司选育而成，相互没有拮抗反应，二者亲缘关系可能较近，但与其他菌株之间的拮抗反应均较明显，表明这2个菌株与其他供试菌株的亲缘关系较远，这与菌种来源是相符的。

    DNA分子标记目前已广泛用于食用菌品种鉴定[15-16，18-22]。SSR具有等位变异高、共显性、简便、快速、稳定的特点[25]。SSR技术在农作物品种鉴定、遗传多样性分析、辅助分子育种等方面得到大量应用[20-28]。本研究结合相似性系数矩阵表，以相似性系数0.76为阈值，可将供试菌株分成4个类群，表明这9个双孢蘑菇菌株具有一定的遗传多样性与遗传丰富度。

    有研究报道体细胞不亲和性试验的分类结果与分子标记聚类分析的结果基本相同。唐传红等的[16]利用拮抗试验和RAPD分子标记技术分析了供试菌株的亲缘关系，结果表明2种方法的鉴定结论是一致。杏鲍菇[29]，黑木耳[30-31]等的研究结果也佐证了这一结论。但杨和川等[15]对29个金针菇进行遗传多样性分析结果表明，大部分拮抗对峙试验结果与聚类分析结果一致，也存在不一致的。因此采用多种鉴定方法对供试菌株进行综合分析，可以得出更准确结论。本研究综合体细胞不亲和性试验和SSR分子标记技术两种方法对供试的9个双孢蘑菇菌株进行鉴定分析，结果表明两种方法所得到的结果基本一致。如HK与其他供试菌株均存在明显拮抗线，SSR分子标记聚类结果也显示HK与其他菌株平均相似系数仅为0.626，单独聚为一类；A15和901二者之间不存在拮抗反应，而与其他供试菌株均存在不同程度的拮抗反应，聚类分析结果显示A15和901相似系数为0.765，与其他菌株平均相似系数分别为0.614和0.579，这两个菌株遗传背景相近，而与其他供试菌株亲缘关系较远。

    不同DNA分子标记方法的开发原理是有一定区别的，有时不同分子标记方法的聚类分析结果会存在一定的差异。杨军[32]综合ISSR和RAPD两种分子标记鉴定分析供试灰树花菌株，结果表明利用2种分子标记比单独使用分子标记鉴定的结果更准确。本研究是综合拮抗反应试验的分类结果与分子标记聚类分析的结果，可以考虑进一步采用其他分子标记验证本试验结果。

  • 图  1   大刺鳅仔鱼的初次摄食率

    Figure  1.   Initial feeding rates of M. armatus larvae

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    图  2   不同开口饵料投喂24 h后仔鱼开口摄食率和摄食强度

    注：不同字母代表各饵料组之间差异显著(P＜0.05)。

    Figure  2.   Feeding rate and intensity of M. armatu larvae on various forages after 24 h of feeding

    Note: Different letters indicates significant differences among the bait groups (P＜0.05).

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    图  3   饥饿和不同开口饵料下大刺鳅仔鱼的全长特定生长率

    Figure  3.   SGR on body length of M. armatu larvae under feeding with various forages or starvation

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    图  4   饥饿和不同开口饵料下大刺鳅仔鱼的体质量特定生长率

    Figure  4.   SGR on body weight of M. armatu larvae under feeding with various forages or starvation

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    表  1   大刺鳅仔鱼卵黄囊和油球的吸收

    Table  1   Absorptions on yolk sac and fat-globules by M. armatu larvae

    日龄
    Day post hatching/d    		饥饿组 Starvation group 对照组 Control group
    仔鱼全长
    Total length/mm    		卵黄囊体积
    Volume of yolk sac/mm3    		油球体积
    Volume of oil globule/mm3    		 仔鱼全长
    Total length/mm    		卵黄囊体积
    Volume of yolk sac/mm3    		油球体积
    Volume of oil globule/mm3
    0 5.85±0.11 9.47±0.70 a 0.74±0.09 a 5.85±0.15 9.49±0.69 a 0.79±0.02 a
    1 6.65±0.10 7.34±0.14 a 0.64±0.09 a 6.66±0.06 7.38±0.16 a 0.65±0.10 a
    2 7.72±0.23 4.20±0.19 a 0.51±0.05 a 7.74±0.13 4.13±0.79 a 0.49±0.07 a
    3 8.78±0.16 3.94±0.11 a 0.47±0.10 a 8.79±0.29 4.01±0.21 a 0.50±0.09 a
    4 9.18±0.12 3.75±0.24 a 0.30±0.05 a 9.16±0.31 3.69±0.29 a 0.31±0.03 a
    5 9.50±0.44 2.55±0.69 a 0.30±0.07 a 9.51±0.19 2.60±0.63 a 0.30±0.06 a
    6 10.60±0.26 2.16±0.33 a 0.29±0.06 a 10.69±0.31 2.47±0.32 b 0.29±0.06 a
    7 11.78±0.36 1.81±0.23 a 0.27±0.05 a 11.84±0.23 1.31±0.38 b 0.27±0.01 a
    8 12.01±0.84 1.45±0.42 a 0.18±0.03 a 12.34±0.32 0.87±0.29 b 0.16±0.03 a
    9 12.47±0.62 0.55±0.21 a 0.16±0.05 a 12.98±0.84 0.29±0.08 b 0.11±0.01 b
    10 12.49±0.80 0.32±0.01 a 0.09±0.02 a 13.83±0.10 0 b 0.01±0.00 b
    11 12.51±0.65 0 0.01±0.00 14.80±0.98 0 0
    12 12.48±0.76 0 0 16.91±0.58 0 0
    13 12.41±0.73 0 0 18.29±0.86 0 0
    注：同行同一项目数据后不同小写字母表示试验组与对照组间差异显著(P＜0.05)。
    Note: Different lowercase letters after the same project data indicate significant differences between the test groups (P＜0.05).
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    表  2   饥饿和不同开口饵料对大刺鳅仔鱼全长的影响

    Table  2   Growth by body length of M. armatu larvae under feeding with various forages or starvation

    投喂天数
    Feeding days/d    		全长 Total length/mm
    枝角类
    Freshwater cladocera    		丰年虫无节幼体Nauplius of brine shrimp蛋黄
    Egg yolk    		虾奶粉
    Shrimp larvae feed    		A#鱼苗开口料
    Prepared feed larvstart-A    		饥饿组
    Starvation group
    0 9.48±0.75 a 9.48±0.75 a 9.48±0.75 a 9.48±0.75 a 9.48±0.75 a 9.48±0.75 a
    2 11.88±0.75 a 11.88±0.75 a 11.80±0.94 a 11.83±0.91 a 11.88±0.87 a 11.82±0.89 a
    4 13.04±0.82ab 13.98±1.01 a 12.85±0.44 b 12.80±0.75 b 12.83±0.58 b 12.81±0.75 b
    6 14.66±0.62 a 15.20±0.77 a 12.84±0.69 b 12.83±0.76 b 12.89±0.67 b 12.81±0.89 b
    8 17.72±1.17 a 16.79±0.98 a 12.83±0.21 b 12.77±0.54 b 12.72±0.70 b 12.79±0.91 b
    10 19.50±1.46 a 19.06±1.11 a 12.79±0.17 b 12.73±0.54 b 12.66±0.43 b 12.76±0.46 b
    12 21.42±1.36 a 22.75±1.32 a 12.63±0.48 b 12.59±0.55 b 12.56±0.50 b 12.71±0.42 b
    14 23.48±1.67 b 28.46±2.57 a
    16 26.20±0.76 b 32.00±1.06 a
    18 29.42±1.42 b 35.78±2.00 a
    20 32.52±3.06 b 39.91±2.07 a
    22 34.91±2.62 b 42.69±3.55 a
    24 36.58±1.77 b 44.65±2.53 a
    日均增长 Daily length gain/（mm·d−1） 1.13±0.09 b 1.47±0.11 a 0.26±0.07 c 0.26±0.06 c 0.26±0.09 c 0.27±0.08 c
    增长率 Growth rate/% 288.19±41.86 b 373.28±44.56 a 33.89±11.84 c 33.35±10.30 c 33.35±14.80 c 34.83±13.30 c
    全长特定生长率
    Specific growth rate of total length/（%·d−1）    		 5.63±0.44 a 6.46±0.40 a 2.41±0.73 b 2.38±0.64 b 2.36±0.88 b 2.46±0.83 b
    注：同行数据后不同小写字母代表各饵料组之间差异显著(P＜0.05)。表3、4同。
    Note: Different letters of the same feeding days indicates significant differences among the bait groups (P＜0.05). The same as Table 3, 4.
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    表  3   饥饿和不同开口饵料对大刺鳅仔鱼体质量的影响

    Table  3   Growth by body weight of M. armatu larvae under feeding with various forages or starvation

    投喂天数
    Feeding days/d    		体质量 Body mass/mg
    枝角类
    Freshwater cladocera    		丰年虫无节幼体
    Nauplius of brine shrimp    		蛋黄
    Egg yolk    		虾奶粉
    Shrimp larvae feed    		A#鱼苗开口料
    prepared feed larvstart-A    		饥饿组
    Starvation group
    0 9.24±0.80 a 9.24±0.80 a 9.24±0.80 a 9.24±0.80 a 9.24±0.80 a 9.24±0.80 a
    2 9.92±0.75 a 11.18±1.22 b 9.60±0.77 a 9.80±1.010 a 9.64±0.69 a 9.92±0.91 a
    4 10.70±2.17 a 14.20±2.66 b 9.60±1.19 a 9.50±0.71 a 10.23±1.11 a 9.54±1.42 a
    6 16.36±1.21 a 20.66±3.05 b 9.40±1.07 c 9.20±0.77 c 9.84±0.73 d 9.32±1.13 cd
    8 20.38±1.93 a 24.90±3.75 b 8.70±0.75 c 8.50±0.60 c 8.93±0.91 c 8.33±1.12 c
    10 26.94±3.16 a 33.92±4.85 b 7.50±0.38 c 7.40±0.39 c 8.14±0.47 c 7.82±0.68 c
    12 38.60±7.08 a 50.08±9.50 b 6.92±0.42 c 7.07±0.58 c 7.64±0.53 c 7.19±0.47 c
    14 50.10±8.42 a 79.24±15.52 b
    16 68.64±2.33 a 106.48±10.66 b
    18 87.38±8.87 a 138.13±17.88 b
    20 101.06±27.85 a 172.04±15.09 b
    22 113.08±20.14 a 210.64±56.62 b
    24 118.58±13.44 a 251.26±68.33 b
    日均增重
    Daily average weight increasement/（mg·d−1）    		 4.56±0.58 b 10.08±2.82 a −0.19±0.09 c −0.18±0.08 c −0.13±0.08 d −0.17±0.09 c
    增重率 Weight gain rate/% 1183.33±239.13 b 2619.26±754.73 a −25.11±4.34 c −23.49±8.72 c −17.32±6.92 d −22.19±8.44 c
    体质量特定生长
    Specific growth rate of body mass/(%·d−1）    		 10.63±0.79 b 13.76±1.18 a −2.41±0.50 c −2.23±0.95 c −1.58±0.74 d −2.09±0.91 c
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    表  4   饥饿和不同开口饵料对大刺鳅仔鱼成活率的影响

    Table  4   Survival rates of M. armatu larvae under feeding with various forages or starvation （单位：%）

    投喂天数
    Feeding days/d    		饵料组 Diet groups饥饿组
    Starvation group
    枝角类
    Freshwater cladocera    		丰年虫无节幼体
    Nauplius of brine shrimp    		蛋黄
    Egg yolk    		虾奶粉
    Shrimp larvae feed    		A#鱼苗开口料
    Prepared feed larvstart-A
    0100.00±0.00 a100.00±0.00 a100.00±0.00 a100.00±0.00 a100.00±0.00 a100.00±0.00 a
    296.79±1.13 a95.08±1.54 ab93.33±0.95 b95.56±2.40 ab93.65±1.10 b93.33±0.95 b
    492.00±0.83 a91.51±1.56 a89.05±2.96 a90.88±3.68 a87.63±0.55 a87.98±2.85 a
    685.88±5.09 a85.51±4.81 a78.68±2.82 b65.78±0.90 c67.76±5.19 c76.63±2.63 b
    880.30±6.41 a79.23±6.09 a47.82±7.06 bc39.08±5.90 c42.73±4.72 bc50.82±3.05 b
    1075.28±8.43 a74.64±6.97 a36.06±3.81 b23.32±7.64 c29.51±4.82 bc39.16±3.70 b
    1269.66±9.47 a68.91±8.02 a21.66±3.98 b13.41±3.49 c15.95±1.04 bc25.76±2.66 b
    1467.96±10.10 a65.47±8.56 a0.00 b0.00 b0.00 b0.00 b
    1665.34±10.38 a61.85±8.04 a
    1863.26±11.24 a60.31±8.24 a
    2058.86±11.03 a56.58±6.18 a
    2257.44±11.58 a52.54±7.43 a
    2456.18±13.29 a50.26±6.84 a
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出版历程
  • 收稿日期:  2019-09-28
  • 修回日期:  2019-10-24
  • 刊出日期:  2019-11-30

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摘要
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  • 0.   引言

  • 1.   材料与方法

  • 1.1   试验材料

  • 1.2   试验试剂

  • 1.3   供试培养基

  • 1.4   试验方法

  • 1.4.1   培养基制作
  • 1.4.2   体细胞不亲和性试验
  • 1.4.3   供试菌株DNA提取
  • 1.4.4   PCR反应体系与条件
  • 1.4.5   电泳检测和 STR检测

  • 1.5   数据分析

  • 2.   结果与分析

  • 2.1   供试菌株的体细胞不亲和性分析

  • 2.2   供试菌株遗传相似系数分析

  • 2.3   亲缘关系分析

  • 3.   讨论与结论

参考文献(21)
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