Sensitivities of Rhizoctonia solani to Propiconazole and Pyraclostrobin on Rice Plants in Guizhou Province
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摘要:目的 明确贵州省水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性，为水稻纹枯病的科学防治及合理用药提供参考。方法 采用菌丝生长速率法测定从贵州省4个地区采集分离的52株水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性及药剂间的相关性。结果 供试菌株对丙环唑的EC50值为0.058～2.381 μg·mL−1，均值为0.422 μg·mL−1；供试菌株对吡唑醚菌酯的EC50值范围从0.077～0.936 μg·mL−1，均值为0.313 μg·mL−1。抗性水平分析表明，湄潭地区的水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯出现了低抗水平的菌株，抗性频率分别为16.7%、13.3%。聚类分析表明，水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性差异与菌株地理来源无明显相关性，且这两种药剂的敏感性之间也无显著相关性。结论 供试菌株中多数菌株对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性较高。药剂间未产生交互抗性，生产上可以交替使用。Abstract:Objective Sensitivities of Rhizoctonia solani on rice to propiconazole and pyraclostrobin were determined for proper pesticide application on the disease control in Guizhou.Method Mycelium growth rate was used as the criterion for testing the pesticide sensitivities of 52 strains of R. solani collected from 4 regions in the province.Result The EC50 of propiconazole on the pathogens ranged from 0.058 μg·mL−1 to 2.381 μg·mL−1, averaging 0.422 μg·mL−1. That of pyraclostrobin were between 0.077 μg·mL−1 and 0.936 μg·mL−1, averaging 0.313 μg·mL−1. Strains of low resistance to the pesticides were found in Meitan area of the province with a resistance frequency of 16.7% on propiconazole and 13.3% on pyraclostrobin. A cluster analysis showed no significant correlation between the pesticide sensitivities and the geographical origins of the pathogens, nor between the two pesticides.Conclusion A large number of the R. solani isolates in the study were highly sensitive to propiconazole and pyraclostrobin, and no apparent cross-resistance observed between the two fungicides. Hence, alternative application of them for disease control was deemed appropriate.
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Keywords:
- Rhizoctonia solani /
- propiconazole /
- pyraclostrobin /
- pesticide sensitivity /
- cross-resistance
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香蕉产业是我国南方农村重要的农业经济支柱，近些年来，受香蕉枯萎病等病害的影响，其发展受到很大制约。香蕉枯萎病是由尖孢镰刀菌古巴专化型Fusarium oxysporum f. sp. Cubense，Foc引起的一种毁灭性的土传病害[1]。其病原菌主要包括Foc1、Foc2、FocTR4、FocSTR4等类型，其中FocTR4的致病力和侵染力最强[2-4]。Foc在无寄主植物存在的贫瘠土壤仍可存活30余年，给香蕉枯萎病的防治和根治带来巨大困难。目前，应用化学、生物和农业技术防治香蕉枯萎病已经取得一定进展[5-6]。研究发现，韭菜[7-10]、葱[11-12]的提取物对尖孢镰刀菌都有抑制效果，并且将香蕉与它们进行轮作或间作能有效地降低香蕉枯萎病的发生。
竹荪是一种营养丰富的食用兼药用真菌，有“菌中皇后”和“山珍之王”的美称[13]。它不但具有丰富的药用价值，还具抗氧化和抑菌的作用[14-15]。研究发现，长裙竹荪Dictyophora indusiata提取液在pH5.0~8.5条件下对细菌有较强的抑制作用[16]；棘托竹荪Dictyophora echinovolvata的挥发油对桔黄青霉、啤酒酵母具有较好的抑制效果，稀释25倍的挥发油仍具有较强抑制作用[17]；长裙竹荪乙醇提取液对细菌有较强的抑制作用，对霉菌和酵母菌抑制作用较弱[18]。鉴于竹荪具有较好的抑菌效果，本研究对竹荪提取物对香蕉枯萎病菌FocTR4的抑制效果展开研究，以期为其在香蕉枯萎病农业防治中的应用提供依据。
1. 材料与方法
1.1 材料
香蕉枯萎病菌Fusarium oxysporum f. sp. Cubense tropical race 4(FocTR4)和棘托竹荪均由福建农林大学园艺植物生物工程研究所提供。
1.2 竹荪粗提物的制备及培养基配置
新鲜竹荪用自来水冲洗2~3次后用滤纸吸干表面残留水分。称取菌盖、菌柄、菌托各20 g，分别加入无菌水50 mL，放入榨汁机中打磨成匀浆，用4层纱布过滤，向滤液中加无菌水至100 mL后5 000 r·min-1离心5 min取上清。使用0.22 μm过滤头在紫外灭菌的超净工作台中将滤液过滤除菌，收集滤液后加无菌水至100 mL，即获得200 g·L-1的竹荪粗提物溶液。
将灭菌的PDA培养基煮沸，待温度降至50~60℃时加入200 g·L-1的竹荪粗提物溶液至竹荪粗提物终质量浓度为66.7、50.0、40.0 g·L-1，混匀后倒板(培养皿直径为8.5 cm)。以加入等体积无菌水的PDA培养基作为对照。
1.3 FocTR4的培养
使用灭菌的内径为5 mm枪头从在PDA固体培养基上培养7 d的FocTR4菌落边缘打孔获得FocTR4菌块，将菌块倒贴于含有不同质量浓度的竹荪粗提物的PDA培养基中央，于28℃生化培养箱中倒置暗培养。每组处理重复3次。
1.4 数据测定与分析
接种后每天测量菌落直径并计算抑制率，直至FocTR4长满全皿。抑制率计算公式为：抑制率/%=(对照菌落生长直径-处理菌落生长直径)/对照菌落生长直径×100[19]。采用Excel和SPSS进行数据统计和显著性分析。
2. 结果与分析
2.1 竹荪粗提物对FocTR4生长的影响
FocTR4在含有不同质量浓度竹荪粗提物的PDA培养基上的生长情况见表 1和图 1。菌盖粗提物对其抑制效果最佳，且不同质量浓度的菌盖粗提物均极显著抑制FocTR4的生长。菌托粗提物对FocTR4生长也表现出一定的抑制作用，但仅在少数几个时间点(高质量浓度第7 d，中质量浓度第3、4 d、低质量浓度第3 d)显著或极显著小于对照。菌柄粗提物对FocTR4生长的影响最小，在培养前4 d FocTR4在含有高质量浓度菌柄提取物的PDA培养基上的直径甚至大于对照。
表 1 不同质量浓度竹荪粗提物对FocTR4生长的影响Table 1. Effect of bamboo fungus CEs in varied concentrations on growth of FocTR4(单位/cm) 培养天数/d 66.7 g·L-1 50.0 g·L-1 40.0 g·L-1 水 菌盖 菌柄 菌托 水 菌盖 菌柄 菌托 水 菌盖 菌柄 菌托 1 1.09±0.01Bb 0.72±0.01Aa 1.17±0.04Bc 1.13±0.01Bbc 1.18±0.03Bc 0.73±0.01Aa 1.17±0.06Bc 1.13±0.01Bbc 1.16±0.08Bbc 0.76±0.03Aa 1.16±0.05Bc 1.16±0.04Bbc 2 2.21±0.03Cc 1.30±0.01Aa 2.34±0.02Dde 2.33±0.03Dd 2.31±0.01CDd 1.33±0.02ABab 2.33±0.02Dd 2.46±0.03Ef 2.41±0.14DEef 1.39±0.02Bb 2.40±0.03DEef 2.45±0.03Ef 3 3.14±0.08Cc 1.94±0.02Aa 3.28±0.08DEd 3.10±0.04Cc 3.29±0.02DEd 2.03±0.06ABa 3.34±0.01Ed 3.13±0.02Cc 3.30±0.07DEd 2.14±0.02Bb 3.29±0.12DEd 3.17±0.02CDc 4 4.38±0.12Dd* 2.72±0.02Aa 4.50±0.01EFGfgh* 4.40±0.02DEde* 4.53±0.02FGgh* 2.91±0.06Bb 4.59±0.02Gh* 4.43±0.03DEFdef* 4.54±0.02FGgh* 3.06±0.02Cc 4.53±0.09FGgh* 4.48±0.02DEFGefg* 5 5.33±0.38Cc 3.46±0.05Aa 5.35±0.14Cc 5.29±0.11Cc 5.35±0.11Cc 3.63±0.09ABab 5.31±0.08Cc 5.20±0.14Cc 5.32±0.07Cc 3.76±0.11Bb 5.27±0.08Cc 5.24±0.08Cc 6 6.59±0.83Bb** 4.41±0.04Aa* 6.41±0.13Bb** 6.27±0.09Bb** 6.60±0.12Bb** 4.47±0.07Aa* 6.48±0.10Bb** 6.26±0.14Bb** 6.63±0.06Bb** 4.75±0.12Aa* 6.41±0.09Bb** 6.48±0.07Bb** 7 7.63±0.85Bc 5.34±0.05Aa 7.50±0.18Bbc 7.14±0.25Bb 7.64±0.19Bc 5.40±0.04Aa 7.45±0.10Bbc 7.21±0.12Bbc 7.28±0.07Bbc 5.73±0.15Aa** 7.33±0.08Bbc 7.45±0.19Bbc 8 8.26±0.15Ccde 6.46±0.04Aa** 8.34±0.11Ce 8.13±0.09Cc 8.26±0.05Ccde 6.51±0.05Aa** 8.25±0.15Ccde 8.15±0.05Ccd 8.16±0.06Ccd 6.83±0.10Bb 8.30±0.02Cde 8.20±0.06Ccde 9 8.47±0.05Cc 7.33±0.06Aa 8.47±0.05Cc 8.42±0.07Cc 8.49±0.02Cc 7.38±0.02Aa 8.47±0.06Cc 8.46±0.04Cc 8.50±0.00Cc 7.81±0.12Bb 8.50±0.00Cc 8.48±0.03Cc 10 8.50±0.00Cd 8.16±0.02Aa 8.50±0.00Cd 8.50±0.00Cd 8.50±0.00Cd 8.19±0.01Ab 8.50±0.00Cd 8.50±0.00Cd 8.50±0.00Cd 8.34±0.02Bc 8.50±0.00Cd 8.50±0.00Cd 11 8.50±0.00Aa 8.50±0.00Aa 8.50±0.00Aa 8.50±0.00Aa 8.50±0.00Aa 8.50±0.00Aa 8.50±0.00Aa 8.50±0.00Aa 8.50±0.00Aa 8.50±0.00Aa 8.50±0.00Aa 8.50±0.00Aa 注：①表中数据为菌落直径。②*为菌落直径超过全板的1/2，**为菌落直径超过全板的2/3。③同行数据后不同大、小写字母表示差异极显著(P＜0.01)和差异显著(P＜0.05)。 ![]()
图 1 FocTR4在含有不同质量浓度竹荪粗提物的PDA培养基上的生长情况注：A、B、C、D分别为无菌水、菌盖、菌柄、菌托；标尺为1 cm。Figure 1. FocTR4 growth on PDA media containing varied concentrations of bamboo fungus CEs统计菌丝覆盖培养皿1/2、2/3和满皿的时间，发现：FocTR4在含有菌盖粗提物的培养基上菌丝覆盖培养皿1/2的时间比其他处理(4 d)推迟2 d，高、中质量浓度菌盖粗提物使FocTR4长至培养皿2/3的时间推迟2 d(其他处理均为6 d)，低质量浓度仅推迟1 d。FocTR4在含有高、中、低质量浓度的菌盖粗提物培养基上均在第11 d时长满全皿，分别比对照晚1、1、2 d。FocTR4在含有不同质量浓度菌托粗提物和中、高质量浓度菌柄粗提物的培养基上长满全皿的时间均为10 d，在含有低质量浓度菌柄粗提物的培养基上为9 d(与对照无差异)。
2.2 竹荪不同部位粗提物对FocTR4抑制效果比较
比较不同部位的竹荪粗提物对FocTR4的抑制效果，发现：竹荪菌盖粗提物对FocTR4的抑制率最高。在培养前6 d，不同质量浓度的菌盖粗提物对FocTR4的抑制率均高于25%(图 2)，且均在第2 d达到最大值，分别为41.18%、42.28%和42.19%，之后抑制率开始缓慢下降(图 2、表 2)。菌柄、菌托抑制效果较差，抑制率均低于10%(图 2)。
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图 2 不同部位竹荪粗提物对FocTR4的抑制效果的比较注：A、B、C分别代表 66.7、50.0、40.0 g·L-1的粗提物。Figure 2. Inhibition effect of bamboo fungus crude extracts at varied concentrations on FocTR4 growth表 2 不同质量浓度竹荪菌盖粗提物对FocTR4的抑制效果比较Table 2. Comparisons of the inhibition effects of bamboo fungus pileus crude extracts with different concentrations培养天数/d 66.7 g·L-1/% 50.0 g·L-1/% 40.0 g·L-1/% 1 33.94±0.01Aa 38.42±0.00Ab 34.20±0.03Aa 2 41.18±0.00Aa 42.28±0.01Aa 42.19±0.01Aa 3 38.11±0.00Ab 38.40±0.02Ab 35.05±0.00Aa 4 37.98±0.00Bc 35.84±0.01Bb 32.53±0.01Aa 5 35.02±0.01Bb 32.09±0.02ABab 29.26±0.02Aa 6 33.08±0.01Bb 32.27±0.01Bb 28.31±0.02Aa 7 29.97±0.01Bb 29.32±0.01Bb 21.29±0.02Aa 8 21.79±0.00Bb 21.23±0.01Bb 16.30±0.01Aa 9 13.42±0.01Bb 13.03±0.00Bb 8.16±0.01Aa 10 4.00±0.00Bc 3.61±0.00Bb 1.92±0.00Aa 11 0.00±0.00Aa 0.00±0.00Aa 0.00±0.00Aa 注：同行数据后不同大、小写字母表示差异极显著(P＜0.01)和差异显著(P＜0.05)。 进一步比较不同质量浓度菌盖粗提物的抑制效果(表 2)，发现：66.7 g·L-1与40.0 g·L-1菌盖粗提物的抑制效果在第3 d时差异显著，第4~10 d差异极显著；而50.0 g·L-1与40.0 g·L-1菌盖提取物的抑制效果在第1、3 d差异显著，在第4 d和第6~10 d差异极显著。66.7 g·L-1和50.0 g·L-1菌盖粗提物对FocTR4的抑制率仅在第1、4、10 d存在显著差异，其余时间点均无显著差异，说明50.0 g·L-1菌盖粗提物即可对FocTR4生长起到较理想的抑制效果。
3. 讨论
竹荪是一种珍贵的药食两用真菌，其营养和保健价值极高。近些年的研究表明竹荪具有较为广泛的抑菌效果。棘托竹荪的正己烷[20]、丙酮[21]和乙酸乙酯提取物[22]对霉菌、酵母菌和细菌都表现出较强的抑制效果；棘托竹荪的发酵液对常见的食品腐败菌具有较好的抑菌作用[23]；长裙竹荪和棘托竹荪的提取物和挥发油对细菌生长有一定的抑制效果[24]；棘托竹荪菌盖挥发油可以显著抑制霉菌、细菌和酵母菌的生长[25]。
3.1 竹荪菌盖对FocTR4生长具有较好的抑制作用
本研究首次研究了竹荪对FocTR4生长的影响。研究发现：竹荪粗提物尤其是菌盖粗提物对FocTR4的生长具有较好的抑制效果。檀东飞等[26]发现棘托竹荪菌盖挥发油对桔青霉和黑曲霉的抑制效果显著优于菌托挥发油，与本研究结果相似，说明菌盖中含有更多的抑菌物质。竹荪挥发油的主要成分是有机酸、倍半萜类、酮类、醛类、酚类、醇类、芳烃[27]，而这些化合物都具有抑制微生物生长的作用[28]。因此，菌盖粗提物对FocTR4的抑制效果更佳可能与挥发油含量更高有关。
3.2 竹荪具有应用于香蕉枯萎病农业防治的潜质
由尖孢镰刀菌古巴专化型引起的香蕉枯萎病是威胁香蕉产业发展的重大病害，目前尚无根治的方法。农业防治作为病害防治的重要手段已在香蕉枯萎病防治工作中有了一些成功的报道。其中韭菜、葱和甘蔗等与香蕉的轮/间作已被证明可以有效降低香蕉枯萎病的田间发生率。然而，这些轮/间作植物经济价值较低。竹荪是一种名贵的食用菌，其可食用部分价格较高，而不可食用部分在采收和加工过程中往往被丢弃[29]。菌盖和菌托这两部分废弃物约占子实体的65%[30]，被丢弃后不仅无法利用其抑菌和营养价值，而且还会造成环境污染和资源浪费。
近些年来，竹荪的间作套种技术已经在农作物、果树、林地中得到广泛应用。竹荪与农作物间作可以提高土壤肥力和农作物产量，秸秆和竹荪废弃物还田还可促进物质循环利用[31]。阮瑞国等[32]发现葡萄-竹荪间作可以增加土壤中氮、磷、钾、速效磷、有机质含量，改善土壤理化性质。陈兵等[33]发现橡胶林套种竹荪可以改善土壤墒情，提高土壤有机质、全氮、速效钾、交换钙、交换镁等有效养分含量。鉴于竹荪对FocTR4生长的抑制作用，本研究认为将香蕉与竹荪进行轮/间作也是值得尝试的方法。间作套种不仅可以减轻竹荪的连作障碍，还能达到资源充分利用，提高经济效益，保护环境的效果。目前，香蕉间作和轮作模式生产中主要是与果蔗[34]、木薯[35]和水稻[36]进行轮作。竹荪-香蕉轮/间作既可以获得竹荪的经济价值，同时还可通过将菌盖和菌托还田达到改良土壤、减少香蕉枯萎病的发生和提高香蕉产量和品质的效果。
4. 结论
竹荪粗提物特别是菌盖粗提物对香蕉枯萎病菌FocTR4的生长具有抑制效果。有报道指出竹荪水提取物的抑菌效果弱于正己烷、丙酮、乙酸乙酯提取物[21]，本研究中，竹荪水粗提物对FocTR4表现出较好的抑菌效果，在今后的研究中，利用竹荪有机试剂提取物有望得到更为理想的结果。此外，利用代谢组技术分离纯化竹荪菌盖抑菌成分，同时研究这些物质对枯萎病菌生长的影响效果及其机理，可为香蕉枯萎病的防治提供新的研究方向。
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图 1 水稻纹枯病菌对丙环唑（A）和吡唑醚菌酯（B）的敏感性
Figure 1. Sensitivities of R. solani to propiconazole (A) and pyraclostrobin (B)
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图 2 水稻纹枯病菌对丙环唑（A）和吡唑醚菌酯（B）的敏感性频率分布
Figure 2. Frequency distributions of sensitivities of R. solani to propiconazole (A) and pyraclostrobin (B)
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图 3 水稻纹枯病菌对丙环唑（A）和吡唑醚菌酯（B）的EC50值系统聚类分析
注：A代表丙环唑聚类分析，B代表吡唑醚菌酯聚类分析
Figure 3. Cluster analysis on EC50 of R. solani to propiconazole （A） and pyraclostrobin （B）
Note: A=cluster analysis for propiconazole, B=cluster analysis for pyraclostrobin
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图 4 水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯敏感性的相关性
Figure 4. Correlation on pesticide sensitivities of R. solani between propiconazole and pyraclostrobin
表 1 不同地区纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的敏感性
Table 1 Pesticide sensitivities of R. solani from different regions
采集地
Locality菌株数
Isolate number丙环唑 propiconazole 吡唑醚菌酯 pyraclostrobin EC50范围
Range of EC50/（μg·mL−1）EC50均值
Average value of EC50/（μg·mL−1）EC50范围
Range of EC50/（μg·mL−1）EC50均值
Average value of EC50/（μg·mL−1）惠水 HS Huishui 13 0.065～0.519 （0.256±0.048）b 0.077～0.234 （0.153±0.016）b 湄潭 MT Meitang 18 0.077～2.381 （0.623±0.169）a 0.156～0.936 （0.525±0.062）a 黄平 HP Huangping 12 0.066～0.209 （0.140±0.013）b 0.126～0.383 （0.241±0.020）b 三穗 SS Sansui 9 0.498～1.060 （0.635±0.056）a 0.127～0.317 （0.217±0.019）b 注：同列数字后不同字母表示经新复极差法检验差异显著（P＜0.05）。
Note: Data followed by the different letters are significantly by new multiple range test（ P ＜0.05）.
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表 2 不同地区水稻纹枯病菌对丙环唑和吡唑醚菌酯的抗性水平
Table 2 Pesticide resistances of R. solani from different regions
采集地
Locality菌株数
Isolate number丙环唑 吡唑醚菌酯 不同抗性水平菌株频率
Frequencies at different resistance level/%抗性频率
Resistance frequencies/%抗性水平范围
Range of resistance level不同抗性水平菌株频率
Frequencies at different resistance level/%抗性频率
Resistance frequencies/%抗性水平范围
Range of resistance levelRf＜3 3＜Rf≤10 Rf＜3 3＜Rf≤10 惠水
HS Huishui13 100 0 0 0.14～1.23 100 0 0 0.24～0.75 湄潭
MT Meitang18 83.3 16.7 16.7 0.18～5.64 86.6 13.3 13.3 0.50～3.01 黄平
HP Huangping12 100 0 0 0.16～0.50 100 0 0 0.40～1.22 三穗
SS Sansui9 100 0 0 1.18～2.51 100 0 0 0.41～1.01
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[1] CHEN Z X, FENG Z M, KANG H X, et al. Identification of new resistance loci against sheath blight disease in rice through genome-wide association study [J]. Rice Science, 2019, 26(1): 21−31. DOI: 10.1016/j.rsci.2018.12.002
[2] FENG S J, SHU C W, WANG C, et al. Survival of Rhizoctonia solani AG-1 IA, the causal agent of rice sheath blight, under different environmental conditions [J]. Journal of Phytopathology, 2017, 165(1): 44−52. DOI: 10.1111/jph.12535
[3] 谭清群, 何海永, 陈小均, 等. 贵州水稻纹枯病菌对噻呋酰胺和己唑醇的敏感性测定 [J]. 四川农业大学学报, 2017, 35(2):159−166. TAN Q Q, HE H Y, CHEN X J, et al. Study on sensitivity of Rhizoctonia solani of rice to thifluzamide and texaconazole in Guizhou Province [J]. Journal of Sichuan Agricultural University, 2017, 35(2): 159−166.(in Chinese)
[4] LIU L M, LIANG M Q, LI L, et al. Synergistic effects of the combined application of Bacillus subtilis, H158 and strobilurins for rice sheath blight control [J]. Biological Control, 2018, 117: 182−187. DOI: 10.1016/j.biocontrol.2017.11.011
[5] 吴婕, 席亚东, 李洪浩, 等. 四川省水稻纹枯病菌对井冈霉素抗药性监测 [J]. 西南农业学报, 2015, 28(6):2501−2504. WU J, XI Y D, LI H H, et al. Monitoring of resistance of Thenatephorus cucumeris to jinggangmysin in Sichuan [J]. Southwest China Journal of Agricultural Sciences, 2015, 28(6): 2501−2504.(in Chinese)
[6] 陈小龙, 方夏, 沈寅初. 纹枯病菌对井冈霉素的作用机制、抗药性及安全性 [J]. 农药, 2010, 49(7):481−483. DOI: 10.3969/j.issn.1006-0413.2010.07.004 CHEN X L, FANG X, SHEN Y C. Mechanism, resistance and security of Jinggangmycin against Rhizoctonia solani [J]. Agrochemicals, 2010, 49(7): 481−483.(in Chinese) DOI: 10.3969/j.issn.1006-0413.2010.07.004
[7] 连娜娜, 纪明山, 祁之秋, 等. 东北三省水稻纹枯病病菌对苯醚甲环唑和咪鲜胺的敏感性 [J]. 农药, 2018, 57(9):699−702. LIAN N N, JI M S, QI Z Q, et al. Sensitive baseline of Rhizoctonia solani to Difenoconazole and Prochloraz in northeast three province [J]. Agrochemicals, 2018, 57(9): 699−702.(in Chinese)
[8] 唐小飞, 张夕林. 吡唑醚菌酯防治水稻纹枯病、穗颈瘟的效果及应用技术 [J]. 上海农业科技, 2016(6):128−129. DOI: 10.3969/j.issn.1001-0106.2016.06.072 TANG X F, ZHANG X L. Effect and application technology of pyraclostrobin on Rice Sheath Blight and Rice blast [J]. Shanghai Agricultural Science and Technology, 2016(6): 128−129.(in Chinese) DOI: 10.3969/j.issn.1001-0106.2016.06.072
[9] 张景飞, 袁月芳, 须兆龙, 等. 不同药剂对水稻纹枯病、稻曲病的药效试验 [J]. 上海农业科技, 2013(4):126, 122. ZHANG J F, YUAN Y F, XU Z L, et al. Effects of Different Pesticides on Rice Sheath Blight and Rice False Smut [J]. Shanghai Agricultural Science and Technology, 2013(4): 126, 122.(in Chinese)
[10] 汪汉成, 周明国, 张艳军, 等. 戊唑醇对立枯丝核菌的抑制作用及在水稻上的应用 [J]. 农药学学报, 2007, 9(4):357−362. DOI: 10.3321/j.issn:1008-7303.2007.04.008 WANG H C, ZHOU M G, ZHANG Y J, et al. Fungicidal Activity of Tebuconazole against Rhizoctonia solani and its Application to Rice [J]. Chinese Journal of Pesticide Science, 2007, 9(4): 357−362.(in Chinese) DOI: 10.3321/j.issn:1008-7303.2007.04.008
[11] 唐正合, 汪汉成, 王建新, 等. 丙环唑对水稻纹枯病菌的抑制作用及对纹枯病的防治效果 [J]. 植物保护, 2012, 38(1):158−161. DOI: 10.3969/j.issn.0529-1542.2012.01.034 TANG Z H, WANG H H, WANG J X, et al. Fungicidal activity of propiconazole to Rhizoctonia solani and its control efficacy against rice sheath blight [J]. Plant Protection, 2012, 38(1): 158−161.(in Chinese) DOI: 10.3969/j.issn.0529-1542.2012.01.034
[12] 梁梦琦. 长江中下游稻区稻瘟病菌对稻瘟灵和吡唑醚菌酯的抗性监测[D]. 北京: 中国农业科学院, 2018. LIANG M Q. Monitoring sensitivity of Magnaporthe oryzae to Isoprothiolane and pyraclostrobin in middle and lower reaches of Yangtze[D]. Beijing: Chinese Academy of Agricultural Sciences, 2018. (in Chinese)
[13] 孙雪, 侯志广, 赵晓峰, 等. 多种药剂对水稻纹枯病菌的毒力测定及田间药效 [J]. 农药, 2015, 54(2):139−142. SUN X, HOU Z G, ZHAO X F, et al. Toxicity assay and field control effects of different fungicides against Rhizoctonia solani [J]. Agrochemicals, 2015, 54(2): 139−142.(in Chinese)
[14] 刘郁, 于亚辉. 吡唑醚菌酯施用时期对水稻主要真菌病害防效的影响 [J]. 福建农业学报, 2016, 31(2):175−178. LIU Y, YU Y H. Effect of Pyraclostrobin Application time on controlling major fungal diseases on rice in coastal regions of Liaoning [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences, 2016, 31(2): 175−178.(in Chinese)
[15] 周而勋, 杨媚. 从植物病组织中分离立枯丝核菌的快速、简便技术 [J]. 华南农业大学学报, 1998, 19(1):125−126. ZHOU E X, YANG M. A Rapid and simple technique for the isolation of Rhizoctonia solani from diseased plant tissues [J]. Journal of South China Agricultural University, 1998, 19(1): 125−126.(in Chinese)
[16] 胡贤锋, 李荣玉, 王健, 等. 水稻稻曲病菌的分离鉴定及室内毒力测定 [J]. 福建农业学报, 2017, 32(6):634−638. HU X F, LI R Y, WANG J, et al. Isolation, identification and fungicide toxicity of Ustilaginoidea virens [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences, 2017, 32(6): 634−638.(in Chinese)
[17] 徐建强, 刁兴旺, 李恒, 等. 中国河南省小麦纹枯病菌对苯醚甲环唑及戊唑醇的敏感性 [J]. 农药学学报, 2016, 18(5):582−588. XU J Q, DIAO X W, LI H, et al. Sensitivity to difenoconazole and tebuconazole of Rhizoctonia cerealis in Henan province in China [J]. Chinese Journal of Pesticide Science, 2016, 18(5): 582−588.(in Chinese)
[18] 杨帆, 李荣玉, 李明, 等. 水稻纹枯病病菌对苯醚甲环唑的敏感性基线 [J]. 中国植保导刊, 2017, 37(5):67−70. DOI: 10.3969/j.issn.1672-6820.2017.05.013 YANG F, LI R Y, LI M, et al. Sensitive baseline of Rhizoctonia solani to difenoconazole [J]. China Plant Protection, 2017, 37(5): 67−70.(in Chinese) DOI: 10.3969/j.issn.1672-6820.2017.05.013
[19] 孙树青, 李宁波, 曾凯. 丙环唑对水稻纹枯病菌的抑制作用及对纹枯病的防治效果 [J]. 农业科技与信息, 2016(26):87−88. DOI: 10.3969/j.issn.1003-6997.2016.26.058 SUN S Q, LI N B, ZENG K. Fungicidal activity of propiconazole to Rhizoctonia solani and its control efficacy against rice sheath blight [J]. Information of Agricultural Science and Technology, 2016(26): 87−88.(in Chinese) DOI: 10.3969/j.issn.1003-6997.2016.26.058
[20] 孙雪. 水稻纹枯病的防治技术研究[D]. 长春: 吉林农业大学, 2015. SUN X. Research on prevention and treatment technology of Rhizoctonia solani[D]. Changchun: Jilin Agricultural University, 2015. (in Chinese)
[21] 范文艳, 文景芝, 金丽娜, 等. 黑龙江省水稻纹枯病菌的致病力分化与AFLP分析 [J]. 植物保护, 2008, 34(6):57−61. DOI: 10.3969/j.issn.0529-1542.2008.06.013 FAN W Y, WEN J Z, JIN L N, et al. Pathogenic differentiation and AFLP analysis of the rice sheath blight strains from Heilongjiang [J]. Plant Protection, 2008, 34(6): 57−61.(in Chinese) DOI: 10.3969/j.issn.0529-1542.2008.06.013
[22] 陈涛, 张震, 柴荣耀, 等. 浙江省水稻纹枯病菌的遗传分化与致病力研究 [J]. 中国水稻科学, 2010, 24(1):67−72. DOI: 10.3969/j.issn.1001-7216.2010.01.12 CHEN T, ZHANG Z, CAI R Y, et al. Genetic diversity and pathogenicity variation of different Rhizoctonia solani isolates in rice from Zhejiang Province, China [J]. Chinese Journal of Rice Science, 2010, 24(1): 67−72.(in Chinese) DOI: 10.3969/j.issn.1001-7216.2010.01.12
[23] 刘志恒, 韩翔宇, 杨红, 等. 辽宁省水稻纹枯病菌菌丝融合群鉴定初报 [J]. 沈阳农业大学学报, 2010, 41(1):82−85. DOI: 10.3969/j.issn.1000-1700.2010.01.018 LIU Z H, HAN X Y, YANG H, et al. Identification of Anastomosis Groups of Rhizoctonia solani on Rice in Liaoning Province [J]. Journal of Shenyang Agricultural University, 2010, 41(1): 82−85.(in Chinese) DOI: 10.3969/j.issn.1000-1700.2010.01.018
[24] 张优, 魏松红, 王海宁, 等. 东北地区水稻纹枯病菌遗传多样性和致病性分析 [J]. 沈阳农业大学学报, 2017, 48(1):9−14. ZHANG Y, WEI S H, WANG H N, et al. Genetic diversity and pathogenicity of Rhizoctonia solani isolates causing sheath blight disease of rice in northeast region [J]. Journal of Shenyang Agricultural University, 2017, 48(1): 9−14.(in Chinese)
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期刊类型引用(4)
1. 刘畅，周舟，周枫. 竹荪不同溶剂浸提液的抑菌及防腐效果研究. 安徽农学通报. 2024(17): 89-92 . 
百度学术
2. 张艳，曾凤花，农倩，覃丽萍，窦同心，邱美莎，谢玲. 抗病和感病香蕉品种根系内生细菌群落结构与多样性. 南方农业学报. 2023(02): 365-375 . 百度学术
3. 刘范，王斌，伍俊为，武欢，刘嘉鹏，田娜，黄玉吉，程春振. 印度梨形孢和FocTR4对香蕉根系微生物群落结构的影响. 福建农林大学学报(自然科学版). 2022(01): 53-61 . 百度学术
4. 滕秋梅，杨晓东，何成新，徐广平，黄玉清，张德楠，孙英杰，牟海飞，韦绍龙，周龙武. 韭菜化感物质草莓酸对香蕉枯萎病菌的影响. 广西植物. 2022(11): 1901-1912 . 百度学术
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