伪狂犬病(Pseudorabies，PR)是由疱疹病毒引起的多种家畜和野生动物以发热、奇痒及脑脊髓炎为主要症状的一种疾病^[1]，该病主要表现为妊娠母猪流产，木乃伊胎和产弱仔，初生仔猪出现腹泻及神经症状高感染率和高死亡率，公猪睾丸炎等，是严重危害养猪业的主要传染病之一。近年来在集约化、规模化猪场，采用伪狂犬基因缺失疫苗进行猪群伪狂犬病防治，得到有效控制^[2-3]。但2011年以来，猪伪狂犬病疫情率先在华北暴发，许多使用基因缺失活疫苗免疫的规模化猪场出现了疑似PR流行^[4-8]。福建地区猪场也出现大面积感染PR现象，包括免疫伪狂犬病毒(PRV) gE基因缺失疫苗的规模化猪场，阳性率普遍升高，疫情日趋严重。其临床症状为公猪精液质量下降，部分母猪流产、死胎，仔猪顽固性腹泻，保育猪和育肥猪打喷嚏、咳嗽的呼吸道症状，并于2012年从病死猪中分离到一株新型PRV病毒(命名为PRV-FJ2012)^[9]。

PRV弱毒FB株是FA株经鸡胚细胞体外培养500代后，再以选斑和低温诱变相结合在原代乳兔肾(RK)细胞上32℃传180代后选育而成的弱毒株，FB株对易感动物(牛、山羊、小猪)不但安全性好，且具有良好的免疫原性；FB与gE基因缺失的Bartha-K61株相比，对家兔致病力更弱、更安全^[10-11]。为了评价PRV弱毒FB株预防新型PRV的潜力，应用微量交叉中和试验(NT)比较了4株伪狂犬病毒(FA、FB、Bartha-K61和FJ2012)之间的抗原相关性，通过免疫攻毒保护试验评价FB株对预防新型PRV的潜力，为进一步研究安全有效的疫苗提供依据。

1.   材料与方法

1.1   病毒株和高免血清

PRV FA株^[12-13]和FB株^[10-14]均由福建省农业科学院畜牧兽医研究所分离鉴定、选育并保存；PRV FJ2012由福建省农业科学院畜牧兽医研究所猪病研究室分离、鉴定并保存^[9]；兔抗PRV FA、FB、Bartha-K61和FJ2012高免血清由本课题组制备并保存；PRV Bartha-K61株购自中国兽药监察所。

1.2   试验用禽胚、动物及试剂

9日龄SPF鸡胚购自福州大北农生物技术有限公司；12头PRV gB抗体阴性的20日龄仔猪购自福建某健康种猪场；体重2～3 kg雄性新西兰大白兔购自闽侯吴氏实验动物贸易有限公司；羊抗兔酶标二抗购自博士德生物工程有限公司。

1.3   病毒增殖

分别将PRVFJ2012、FA、FB和Bartha-K61株病毒，按维持液量的1%接种于单层CEF细胞瓶，置37℃温箱培养，每日观察细胞病变，当病变达75%收冻于-20℃，冻融3次后，收获细胞毒，-70℃保存备用。

1.4   病毒TCID₅₀测定

将上述病毒用细胞维持液作10倍系列稀释后，接种于已长成单层CEF 96孔细胞培养板，每一个稀释度接种4孔，每孔接毒量100 μL，并设对照，37℃、6% CO₂培养箱培养，每天观察细胞病变情况并记录，一直观察至7 d，出现CPE者判为感染，按Reed-Muench法计算TCID₅₀。

1.5   微量中和试验

在96孔CEF单层细胞板上按固定病毒-稀释血清法进行中和试验。先将兔抗PRV高免血清(FJ2012ab、FAab、FBab和Bartha-K61ab)，经56℃水浴作用30 min后进行2倍比系列稀释，分别取不同稀释度血清与200TCID₅₀等量混合，37℃作用1 h，每个稀释度接种4孔CEF单层细胞，每孔100 μL，同时设正常细胞对照、不同毒株的病毒对照。置37℃、6.0% CO₂培养箱培养，每天观察细胞病变情况并记录，连续观察至7 d，按Reed-Muench法分别计算各自高免血清的中和抗体效价(PD₅₀)及其与不同毒株间的交叉中和抗体效价。

1.6   抗原相关性判定标准^[15]

根据公式$R{\rm{ = }}\sqrt {{r_1} \cdot {r_2}}$，计算各病毒株之间的抗原相关性。R为两毒株间抗原性差异，r₁为乙血清对甲病毒的抗体效价/甲血清对甲病毒的抗体效价，r₂为甲血清对乙病毒的抗体效价/乙血清对乙病毒的抗体效价。当相关系数R>0.8，则两毒株为同一血清型；当相关系数R=0.25～0.80时，两毒株为同一血清型不同亚型；当相关系数R < 0.25，则两毒株为不同血清型；R值越小则病毒株之间抗原性差异越大。

1.7   易感仔猪免疫攻毒试验

20日龄PRV gB抗体阴性健康易感仔猪13头随机分成免疫组、对照组和健康组。其中，免疫组5头，每头肌注FB株细胞毒与英特威佐剂1: 1混合液2 mL(免疫剂量为10^5.5TCID₅₀)，对照组5头，每头肌注Hank′s与英特威佐剂1: 1混合液2 mL，健康组3头不注射。各组隔离饲养，并于免疫后20 d，取免疫组和对照组分别攻毒，每头肌注PRV-FJ2012株2 mL(攻毒剂量10^6.5TCID₅₀)，观察30 d记录发病和死亡情况，评价PRV FB株对新型PRV FJ2012株的保护效果。

2.   结果与分析

2.1   病毒增殖和TCID₅₀测定

病毒按接毒量1%接种于单层CEF细胞瓶后，第2 d出现散在的病灶，即细胞肿胀和圆缩，随后逐渐扩展，直至全部细胞溶解脱落，FA、FJ2012和Bartha-K61毒株均出现大量巨融合细胞病变，而FB毒株的CPE表现为细胞圆缩而无巨融合细胞现象。PRV FJ2012株、FA株、FB株和Bartha-K61株每毫升病毒含量分别为10^6.5 TCID₅₀、10^6.25 TCID₅₀、10^6.0 TCID₅₀和10^6.75 TCID₅₀。

2.2   兔抗PRV高免血清效价测定

按固定病毒稀释血清法，测定兔抗FJ2012ab、FAab、FBab和Bartha-K61ab高免血清与同源病毒之间的中和效价分别为2^6.5(1: 91)、2^6.5(1: 91)、2^5.75(1: 54)和2^7.75(1: 215)；高免血清与同源病毒的中和效价均不同程度高于其与异源病毒的中和效价(表 1)。

表  1  4株PRV交叉中和抗体效价及其抗原相关性R值

Table  1.  VN antibodies and correlation coefficients on antigens of 4 strains of PRV

病毒株	高免血清*					R值
	FAab	FBab	Bartha-K61ab	FJ2012ab		FA	FB	Bartha-K61	FJ2012
FA	6.5	5.5	5.25	6.5		1
FB	6.25	5.75	5.0	6.5		0.84	1
Bartha-K61	6.25	5.25	7.75	5.5		0.39	0.32	1
FJ2012	6.25	5.5	5.5	6.5		0.92	0.92	0.32	1
*注：表中中和抗体数据为-lg2值。

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2.3   4种伪狂犬病毒抗原相关性R值测定

从表 1可知，FA株与FB株、FA株与FJ2012株、FB株与FJ2012株的抗原相关R值分别为0.84、0.92和0.92，即FB株与FA株或FJ2012株之间的抗原相关性大，抗原差异小；Bartha-K61株与FA株、FB株、FJ2012株的抗原相关R值分别为0.39、0.32和0.32，即Bartha-K61株与FA株或FJ2012株在抗原性上存在较大差异；表明弱毒FB株与新型PRV FJ2012株的抗原相关性高于Bartha-K61株与FJ2012株，从抗原性方面提示PRV FB株有望成为预防新型PRV(FJ2012株)的活疫苗候选株。

2.4   易感仔猪FB株免疫攻毒结果

40日龄对照组仔猪肌注新型PRV FJ2012株强毒，于PI 24 h对照攻毒猪出现精神沉郁和食欲减少，并逐渐加重，PI 36 h后全部开始出现喘气、流涏、体温达41℃，喘气和发热一直持续12 d，病猪明显消瘦，其间死亡2头，随后缓慢恢复，观察30 d的发病率100%，死亡率40%(表 2)。而20日龄健康易感仔猪免疫PRV FB株毒后20 d进行攻毒，肌注感染新型PRV FJ2012株强毒，免疫猪攻毒后24 h出现一过性精神沉郁和采食量减少但第二天即恢复正常，观察30 d免疫攻毒组均未出现消瘦和死亡，免疫猪的攻毒保护率100%(5/5)(表 2)；表明PRV FB株免疫猪能抵抗FJ2012株的攻击，FB株有望成为预防新型PRV的候选疫苗株。

表  2  仔猪FB株免疫后对新型PRV FJ 2012株的攻毒保护结果

Table  2.  Viral challenge test of FB on preventing PRV FJ2012 infection

组别	数量/头	免疫剂量	攻毒日龄/d	攻毒剂量	发病率/%	死亡率/%
免疫攻毒组	5	105.5TCID50	40	106.5TCID50	0	0
对照攻毒组	5	0	40	106.5TCID50	100	40
健康对照组	3	0	40	0	0	0

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3.   讨论与结论

PRV FB株是由福建省农业科学院畜牧兽医研究所选育致弱而成，FB株接种仔猪既能刺激机体产生中和抗体，又能产生细胞免疫，且免疫后60 d仍维持较高水平^[16]。魏振明等^[17]以FB株免疫怀孕后期母猪，可使乳猪从初乳中吸收高浓度抗体而获得被动免疫，即FB株对怀孕后期母猪和乳猪均安全有效。以PRV FB免疫130日龄猪，免疫后4d血清中和抗体指数为(1.9 Lg)，免疫后21 d形成峰值(3.5 Lg)，并且能够通过母乳使仔猪得到被动保护，而Bartha-K61株免疫猪的血清中和抗体低下，却有保护作用，即机体产生细胞免疫，提示PRV FB与Bartha-K61株之间存在免疫生物学的差异^[16]。

程由铨等^[18]应用单克隆抗体(McAb)对FB和Bartha-K61株的免疫印迹分析发现，McAbl0只识别FB的105 kD多肽，不识别Bartha-K61株的多肽；该结果与ELISA结果(McAb10只与FA和FB反应，而不与Bartha-K61株反应)相吻合，也证明了PRV不同毒株抗原结构上存在差异。彭金美等^[6]采用固定病毒稀释血清法测定了Bartha-K61和PRV新流行毒HeN1株抗血清之间的交叉中和抗体，发现PRV流行毒株(HeN1株)与疫苗株(Bartha-K61株)之间的抗原性存在一定差异。FJ2012株分离自福建省PR病猪群，该分离株不仅可以导致母猪流产，还可以引起中大猪发病，通过全基因组测序并与经典毒株比较发现FJ2012毒株存在基因变异^[9]。本研究结果发现抗PRV高免血清与同源PRV病毒的中和效价均不同程度高于异源PRV病毒，抗原相关性R值也存在明显差异，且FB株和新型PRV FJ2012株的抗原相关性R值高于Bartha-K61株与FJ2012株的R值，而且对FB免疫猪的攻毒保护试验结果也发现FB株免疫易感仔猪能有效抵抗新型PRV(FJ2012株)的攻毒。以上结果表明PRV不同毒株之间存在抗原性差异，PRV FB株与新型PRV FJ2012株的抗原相关性更高，提示PRV FB株有望成为预防新型PRV(FJ2012株)的疫苗候选株，但FB株对FJ 2012强毒株免疫保护的最小免疫剂量、免疫产生期和持续期等还需进一步测定。