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鳗鲡疱疹病毒与鳗鲡圆环病毒双重PCR检测方法的建立

林而舒 卓玉琛 陈斌 林煜 钟全福 樊海平 曾占壮

林而舒,卓玉琛,陈斌,等. 鳗鲡疱疹病毒与鳗鲡圆环病毒双重PCR检测方法的建立 [J]. 福建农业学报,2022,37(11):1394−1399 doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2022.011.004
引用本文: 林而舒,卓玉琛,陈斌,等. 鳗鲡疱疹病毒与鳗鲡圆环病毒双重PCR检测方法的建立 [J]. 福建农业学报,2022,37(11):1394−1399 doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2022.011.004
LIN E S, ZHUO Y C, CHEN B, et al. Establishment and application of duplex PCR detection system between Anguillid herpesvirus and Eel circovirus [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2022,37(11):1394−1399 doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2022.011.004
Citation: LIN E S, ZHUO Y C, CHEN B, et al. Establishment and application of duplex PCR detection system between Anguillid herpesvirus and Eel circovirus [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2022,37(11):1394−1399 doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2022.011.004

鳗鲡疱疹病毒与鳗鲡圆环病毒双重PCR检测方法的建立

doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2022.011.004
基金项目: 福建省科技计划公益类专项(2022R11010014-5、2023R11010017-4)
详细信息
    作者简介:

    林而舒(1993−),女,硕士,助理农艺师,研究方向:水产病害(E-mail:linershu@qq.com

  • 中图分类号: S 941

Establishment and application of duplex PCR detection system between Anguillid herpesvirus and Eel circovirus

  • 摘要:   目的  建立能同时检测鳗鲡疱疹病毒(Anguillid herpesvirus,AHV)与鳗鲡圆环病毒(Eel circovirus,EeCV)的双重PCR法。  方法  优选PCR引物组合,建立鳗鲡疱疹病毒与鳗鲡圆环病毒的双重PCR检测方法,探究双重PCR扩增条件,并检验该方法的特异性、灵敏性和临床样品检测效果。  结果  双重PCR法同时扩增出鳗鲡疱疹病毒690 bp和鳗鲡圆环病毒338 bp特异性片段,与猪圆环病毒(Porcine circovirus)、鸭圆环病毒(Duck circovirus)、锦鲤疱疹病毒(Koi herpesvirus)和鲤疱疹病毒(Cyprinid herpesvirus)的核酸不发生扩增反应。鳗鲡疱疹病毒和鳗鲡圆环病毒重组质粒标准品的最低全检出量为5.0×10-4 μg·mL-1。用所建立的双重PCR方法对50份临床病鳗进行检验,其中鳗鲡疱疹病毒的感染率为16%,鳗鲡圆环病毒的感染率为68%,共感染率为8%。该感染率与单一PCR检测结果完全一致。  结论  建立的鳗鲡疱疹病毒和鳗鲡圆环病毒双重PCR检测法不仅特异性强、灵敏度高、重复性好,而且临床应用效果佳,为鳗鲡疱疹病毒和鳗鲡圆环病毒的快速检测提供了有效的技术支持。
  • 图  1  单一PCR扩增结果

    1:阴性对照;2:AHV;3:EeCV;4:阴性对照;M:DL-2000 Marker。

    Figure  1.  Routine PCR amplification results

    1: Negative control; 2: AHV; 3: EeCV; 4: Negative control; M:DL-2000 Marker.

    图  2  双重PCR退火温度优化

    1:阴性对照;2~9表示温度为50、50.9、52.3、54、56.3、58.1、59.3、60 ℃;M:DL-2000 Marker。

    Figure  2.  Duplex PCR annealing temperature optimization

    1: Negative control; 2–9: 50, 50.9, 52.3, 54, 56.3, 58.1, 59.3, 60 ℃; M: DL-2000 Marker.

    图  3  双重PCR引物浓度优化

    1:阴性对照;2–6:引物浓度分别为4、6、8、10、12 μmol·L−1;M:DL-2000 Marker。

    Figure  3.  Duplex PCR primer concentration optimization

    1: Negative control; 2–6: 4, 6, 8, 10, 12 μmol·L−1 of primer concentration; M: DL-2000 Marker.

    图  4  双重PCR特异性检验结果

    1:猪圆环病毒;2:鸭圆环病毒;3:鲤疱疹病毒;4:锦鲤疱疹病毒;5:阴性对照;M:DL-2000 Marker。

    Figure  4.  Results of the duplex PCR specificity test

    1: Porcine circovirus; 2: Duck circovirus; 3: Cyprinid herpesvirus; 4: Koi herpesvirus; 5: Negative control; M: DL-2000 Marker.

    图  5  双重PCR敏感性检测结果

    M:DL-2000 Marker;1:阴性对照;2–10:扩增浓度5.0×10−8、5.0×10−7 、5.0×10−6、5.0×10−5、5.0×10−4 、5.0×10−3、5.0×10−2、5.0×10−1、5.0×100 μg·mL−1

    Figure  5.  Results of duplex PCR sensitivity detection

    M: DL-2000 Marker; 1:Negative control; 2–10: 5.0×10−8, 5.0×10−7, 5.0×10−6, 5.0×10−5, 5.0×10−4, 5.0×10−3, 5.0×10−2 , 5.0×10−1, 5.0×100 μg·mL−1.

    图  6  双重PCR临床样品检验结果

    a:AHV和EeCV双重PCR结果;b:AHV单一PCR结果;c:EeCV单一PCR结果。1~6:临床样;7:阴性对照;M:DL-2000 Marker。

    Figure  6.  Results of the duplex PCR clinical sample test

    a:The duplex PCR results for AHV and EeCV; b: Routine PCR result for AHV; c:Routine PCR results of EeCV. 1–6: Clinical samples; 7: Negative control; M:DL-2000 Marker.

    表  1  引物列表

    Table  1.   Primer list

    引物名称
    Primer name
    引物序列(5′-3′)
    Primer sequences(5′-3′)
    目的片段大小
    Primer size/bp
    参考文献
    Reference
    AHV-49FGGATCCATGATTTGTTGGGCGG690[1]
    AHV-49RGAATTCTCATACGCAGCTCCCAAG
    EeCV-FACGACCAGCATAACAAGGA388[4]
    EeCV-RAACCAGCCGTAGAAATCAT
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出版历程
  • 收稿日期:  2022-08-10
  • 修回日期:  2022-11-05
  • 网络出版日期:  2022-12-28
  • 刊出日期:  2022-11-28

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