• 中文核心期刊
  • CSCD来源期刊
  • 中国科技核心期刊
  • CA、CABI、ZR收录期刊

留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

新型鸭呼肠孤病毒、新型鹅细小病毒和鸭坦布苏病毒多重PCR检测方法的建立及初步应用

李海琴 傅光华 康昭风 韦启鹏 谭美芳 黄江南 季华员 黄瑜 杨群

李海琴,傅光华,康昭风,等. 新型鸭呼肠孤病毒、新型鹅细小病毒和鸭坦布苏病毒多重PCR检测方法的建立及初步应用 [J]. 福建农业学报,2022,37(1):1−6 doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2022.01.001
引用本文: 李海琴,傅光华,康昭风,等. 新型鸭呼肠孤病毒、新型鹅细小病毒和鸭坦布苏病毒多重PCR检测方法的建立及初步应用 [J]. 福建农业学报,2022,37(1):1−6 doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2022.01.001
LI H Q, FU G H, KANG Z F, et al. Establishment and Preliminary Application of a Multiple PCR Assay for NDRV, NGPV, and DTMUV Detections [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2022,37(1):1−6 doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2022.01.001
Citation: LI H Q, FU G H, KANG Z F, et al. Establishment and Preliminary Application of a Multiple PCR Assay for NDRV, NGPV, and DTMUV Detections [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2022,37(1):1−6 doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2022.01.001

新型鸭呼肠孤病毒、新型鹅细小病毒和鸭坦布苏病毒多重PCR检测方法的建立及初步应用

doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2022.01.001
基金项目: 江西省重点研发计划项目(20202BBFL63025、20192BBF60028、20161BBF60139);江西现代农业科研协同创新专项(JXXTCX202106);国家水禽产业技术体系建设专项(CARS-43-33);江西省水禽产业技术体系项目(JXARS-09);江西省“双千计划”人才项目(JXSQ2018102118)
详细信息
    作者简介:

    李海琴(1986−),女,硕士,助理研究员,主要从事动物疫病防控研究(E-mail:278030049@qq.com

    通讯作者:

    黄瑜(1966−),男,博士,研究员,主要从事禽病防控研究(E-mail: huangyu_815@163.com

    杨群(1980−),男,硕士,副研究员,主要从事动物疫病防控研究(E-mail: 258008153@qq.com

  • 中图分类号: S 858.32

Establishment and Preliminary Application of a Multiple PCR Assay for NDRV, NGPV, and DTMUV Detections

  • 摘要:   目的  建立能同时检测新型鸭呼肠孤病毒(New-type duck reovirus,NDRV)、新型鹅细小病毒(Novel goose parvovirus,NGPV)和鸭坦布苏病毒(Duck Tembusu virus,DTMUV)的方法。  方法  根据NDRV、NGPV和DTMUV基因组的保守区域设计3对特异性引物,预期特异性扩增NDRV、NGPV和DTMUV的片段大小分别为594、467、328 bp,建立可同时检测NDRV、NGPV和DTMUV的多重PCR检测方法,对其进行特异性、敏感性及重复性检验,并在临床上进行初步应用。  结果  特异性检测结果表明,该多重PCR方法可同时扩增NDRV、NGPV、DTMUV的目的片段,且未扩增出其他鸭常见病原;敏感性结果显示NDRV、NGPV和DTMUV的检测下限分别为8.80×104、4.03×104、2.15×104 copies·μL−1;重复性试验表明该方法具有良好的重复性。采用建立的多重PCR方法对167份临床样品进行检测结果显示,其检测结果与该3种病毒的常规单一PCR检测结果符合率为100%。  结论  建立的多重PCR检测方法具有特异性强、敏感性高、重复性好等优点,适用于临床样品中存在以上3种病原感染的检测和流行病学调查。
  • 图  1  NDRV、NGPV、DTMUV单一和多重PCR扩增

    注:M为DNA Marker DL2000;1为NDRV、NGPV、DTMUV混合液;2为NDRV ;3为NGPV ;4为DTMUV;5为阴性对照。

    Figure  1.  Single and multiple PCR amplifications of NDRV, NGPV, and DTMUV

    Note: M: DNA marker DL2000; 1: mixture of NDRV, NGPV, and DTMUV; 2: NDRV; 3: NGPV; 4: DTMUV; 5: negative control.

    图  2  多重PCR特异性检测

    注:M为DNA Marker DL2000;1为NDRV、NGPV、DTMUV混合液;2为NDRV;3为NGPV;4为DTMUV;5为MDRV;6为MPV;7为DuCV;8为DHV;9为H9AIV;10为DPV;11为NDV;12为阴性对照。

    Figure  2.  Specificity of multiplex PCR assay

    Note: M: DNA marker DL2000; 1: mixture of NDRV, NGPV, and DTMUV; 2: NDRV; 3: NGPV; 4: DTMUV; 5: MDRV; 6: MPV; 7: DuCV; 8: DHV; 9: H9AIV; 10: DPV; 11: NDV; 12: negative control.

    图  3  多重PCR敏感性试验

    注:M为DNA Marker DL2000;1~7分别为107~101 copies·μL−1 NDRV+107~101 copies·μL−1 NGPV+107~101 copies·μL−1 DTMUV;8为阴性对照。

    Figure  3.  Sensitivity of multiplex PCR assay

    Note: M: DNA marker DL2000; 1-7: 107−101 copies·μL−1 NDRV+107−101 copies·μL−1 NGPV+107−101 copies·μL−1 DTMUV; 8: negative control.

    图  4  多重PCR的重复性试验

    注:A、B、C分别代表第1、3、5周的PCR ;M为DNA Marker DL2000;1为NDRV、NGPV、DTMUV混合液;2为NDRV;3为NGPV;4为DTMUV;5为阴性对照。

    Figure  4.  Repeatability of multiplex PCR assay

    Note: A-C: PCR results at week 1, 3, and 5; M: DNA marker DL2000; 1: mixture of NDRV, NGPV, and DTMUV; 2: NDRV; 3: NGPV; 4: DTMUV; 5: negative control.

    表  1  本研究使用的引物序列

    Table  1.   Primer sequences used in this study

    引物名称
    Primer name
    引物序列(5′-3′)
    Primer sequence
    目的片段
    Target fragment/bp
    登录号
    Login number
    参考毒株
    Reference strains
    NDRV-FTCGTCACTACTGTCAAGCTC594JQ664689TH11
    NDRV-RTATGTATGAGAGGAGCCACA
    NGPV-FGGCTCACTGAGAACCGAGAC467MW147180PL157/2019
    NGPV-RAGACCCTCCCAAAATTGCTT
    DTMUV-FGCAGGGTTTGAAGCTGAAAG328MN966680CHN-YC
    DTMUV-RCCCACTTCTATGCCACTGGT
    下载: 导出CSV

    表  2  常规PCR与多重PCR临床样品检测结果比较

    Table  2.   Results of clinical samples using the multiplex PCR and conventional PCR

    临床样品
    Clinical samples
    单项PCR检测结果
    Single PCR results
    多重PCR检测结果
    Multiplex PCR results
    阳性数
    Positive
    阴性数
    Negative
    检出率
    Detection rate/%
    阳性数
    Positive
    阴性数
    Negative
    检出率
    Detection rate/%
    NDRV 4 167 2.39 4 167 2.39
    NGPV 9 167 5.39 9 167 5.39
    DTMUV 11 167 6.58 11 167 6.58
    NDRV+ NGPV 1 167 0.60 1 167 0.60
    NGPV+ DTMUV 1 167 0.60 1 167 0.60
    下载: 导出CSV
  • [1] 熊梦琴, 李玉, 周波. 江西省水禽养殖产业发展模式问题与对策 [J]. 绿色科技, 2020(24):44−47. doi: 10.3969/j.issn.1674-9944.2020.24.015

    XIONG M Q, LI Y, ZHOU B. Problems and Countermeasures of waterfowl breeding industry development model in Jiangxi Province [J]. Journal of Green Science and Technology, 2020(24): 44−47.(in Chinese) doi: 10.3969/j.issn.1674-9944.2020.24.015
    [2] 黄瑜, 卢立志, 傅光华, 等. 当前我国南方养鸭生产中存在的问题与疫病防控措施 [J]. 中国兽医杂志, 2017, 53(8):98−102.

    HUANG Y, LU L Z, FU G H, et al. Epidemic prevention and control measures of problems in duck production in South China [J]. Chinese Journal of Veterinary Medicine, 2017, 53(8): 98−102.(in Chinese)
    [3] 吴双, 姜勇, 徐建生, 等. 鸭坦布苏病毒、鸭肠炎病毒和番鸭细小病毒TaqMan三重实时荧光定量PCR检测方法的建立与临床应用 [J]. 江苏农业学报, 2020, 36(3):626−633. doi: 10.3969/j.issn.1000-4440.2020.03.014

    WU S, JIANG Y, XU J S, et al. Establishment and clinical application of triple TaqMan real-time fluorescence quantitative PCR detection method for duck Tembusu virus, duck enteritis virus and Muscovy duck parvovirus [J]. Jiangsu Journal of Agricultural Sciences, 2020, 36(3): 626−633.(in Chinese) doi: 10.3969/j.issn.1000-4440.2020.03.014
    [4] 陈少莺, 陈仕龙, 林锋强, 等. 新型鸭呼肠孤病毒的分离与鉴定 [J]. 病毒学报, 2012, 28(3):224−230.

    CHEN S Y, CHEN S L, LIN F Q, et al. The isolation and identification of novel duck reovirus [J]. Chinese Journal of Virology, 2012, 28(3): 224−230.(in Chinese)
    [5] LIU Q F, ZHANG G Z, HUANG Y, et al. Isolation and characterization of a reovirus causing spleen necrosis in Pekin ducklings [J]. Veterinary Microbiology, 2011, 148(2/3/4): 200−206.
    [6] YUN T, YE W C, NI Z, et al. Complete genomic sequence of goose-origin reovirus from China [J]. Journal of Virology, 2012, 86(18): 10257. doi: 10.1128/JVI.01692-12
    [7] ZHU Y Q, LI C F, BI Z L, et al. Molecular characterization of a novel reovirus isolated from Pekin ducklings in China [J]. Archives of Virology, 2015, 160(1): 365−369. doi: 10.1007/s00705-014-2241-x
    [8] 陈浩, 窦砚国, 唐熠, 等. 樱桃谷肉鸭短喙长舌综合征病原的分离鉴定 [J]. 中国兽医学报, 2015, 35(10):1600−1604.

    CHEN H, DOU Y G, TANG Y, et al. Isolation and identification of the pathogen of beak atrophy and dwarfish syndrome in cherry valley duck [J]. Chinese Journal of Veterinary Science, 2015, 35(10): 1600−1604.(in Chinese)
    [9] 殷冬冬, 唐井玉, 王瑞, 等. 新型鸭源细小病毒安徽株AH-D15株的分离鉴定 [J]. 中国预防兽医学报, 2016, 38(7):528−531. doi: 10.3969/j.issn.1008-0589.2016.07.004

    YIN D D, TANG J Y, WANG R, et al. Isolation and identification of a newly emerged duck derived Parvovirus [J]. Chinese Journal of Preventive Veterinary Medicine, 2016, 38(7): 528−531.(in Chinese) doi: 10.3969/j.issn.1008-0589.2016.07.004
    [10] LI P, LI J, ZHANG R, et al. Duck “beak atrophy and dwarfism syndrome” disease complex: Interplay of novel goose parvovirus-related virus and duck circovirus? [J]. Transboundary and Emerging Diseases, 2018, 65(2): 345−351. doi: 10.1111/tbed.12812
    [11] LI C, LI Q, CHEN Z, et al. Novel duck parvovirus identified in Cherry Valley ducks (Anas platyrhynchos domesticus), China [J]. Infection, Genetics and Evolution, 2016, 44: 278−280. doi: 10.1016/j.meegid.2016.07.020
    [12] CHEN H, TANG Y, DOU Y, et al. Evidence for vertical transmission of novel duck-origin goose parvovirus-related parvovirus [J]. Transboundary and Emerging Diseases, 2016, 63(3): 243−247. doi: 10.1111/tbed.12487
    [13] YAN P X, ZHAO Y S, ZHANG X, et al. An infectious disease of ducks caused by a newly emerged Tembusu virus strain in mainland China [J]. Virology, 2011, 417(1): 1−8. doi: 10.1016/j.virol.2011.06.003
    [14] LIU P P, LU H, LI S, et al. Duck egg drop syndrome virus: An emerging Tembusu-related Flavivirus in China [J]. Science China Life Sciences, 2013, 56(8): 701−710. doi: 10.1007/s11427-013-4515-z
    [15] ZHANG W, CHEN S, MAHALINGAM S, et al. An updated review of avian-origin Tembusu virus: A newly emerging avian Flavivirus [J]. The Journal of General Virology, 2017, 98(10): 2413−2420. doi: 10.1099/jgv.0.000908
    [16] 杨晶, 张日腾, 王振忠, 等. 我国部分地区鸭病毒性疫病共感染的流行病学调查 [J]. 中国兽医学报, 2018, 38(10):1872−1877.

    YANG J, ZHANG R T, WANG Z Z, et al. Epidemiological investigation on co-infection of ducks viral pathogens in some areas of China [J]. Chinese Journal of Veterinary Science, 2018, 38(10): 1872−1877.(in Chinese)
    [17] 谢碧林, 林志敏, 林彬彬, 等. 新型鸭呼肠孤病毒病研究进展 [J]. 福建畜牧兽医, 2021, 43(1):23−26,30. doi: 10.3969/j.issn.1003-4331.2021.01.009

    XIE B L, LIN Z M, LIN B B, et al. Research progress of new duck reovirus [J]. Fujian Journal of Animal Husbandry and Veterinary Medicine, 2021, 43(1): 23−26,30.(in Chinese) doi: 10.3969/j.issn.1003-4331.2021.01.009
    [18] 王辉, 王秀云, 焦绪娜, 等. 新型鹅细小病毒研究进展 [J]. 中国动物传染病学报, 2020, 28(2):115−118.

    WANG H, WANG X Y, JIAO X N, et al. Progress in the study of novel goose parvovirus [J]. Chinese Journal of Animal Infectious Diseases, 2020, 28(2): 115−118.(in Chinese)
    [19] 张帆帆, 曾艳兵, 方绍培, 等. 鸭坦布苏病毒病的研究进展 [J]. 畜牧兽医学报, 2021, 52(6):1489−1497. doi: 10.11843/j.issn.0366-6964.2021.06.005

    ZHANG F F, ZENG Y B, FANG S P, et al. Research progress in duck tembusu virus disease [J]. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, 2021, 52(6): 1489−1497.(in Chinese) doi: 10.11843/j.issn.0366-6964.2021.06.005
    [20] 李海琴, 傅光华, 黄江南, 等. 鸭三种病毒性疾病多重PCR检测方法的建立及初步应用 [J]. 福建农业学报, 2018, 33(7):655−659.

    LI H Q, FU G H, HUANG J N, et al. Multiplex PCR assay for simultaneous detection of three duck viral diseases [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences, 2018, 33(7): 655−659.(in Chinese)
  • 加载中
图(4) / 表(2)
计量
  • 文章访问数:  671
  • HTML全文浏览量:  294
  • PDF下载量:  69
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2021-08-24
  • 修回日期:  2021-09-29
  • 网络出版日期:  2022-01-21
  • 刊出日期:  2022-01-28

目录

    /

    返回文章
    返回