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牛病毒性腹泻/黏膜病病毒荧光定量PCR检测方法的建立

张康 郭志廷 仇正英 张景艳 王磊 张凯 王贵波 梁芬芬 马倩 李建喜

张康,郭志廷,仇正英,等. 牛病毒性腹泻/黏膜病病毒荧光定量PCR检测方法的建立 [J]. 福建农业学报,2021,36(9):1042−1047 doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2021.09.007
引用本文: 张康,郭志廷,仇正英,等. 牛病毒性腹泻/黏膜病病毒荧光定量PCR检测方法的建立 [J]. 福建农业学报,2021,36(9):1042−1047 doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2021.09.007
ZHANG K, GUO Z T, QIU Z Y, et al. A RT-PCR Assay for Quantitative Detection of Bovine Viral Diarrhea Virus [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2021,36(9):1042−1047 doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2021.09.007
Citation: ZHANG K, GUO Z T, QIU Z Y, et al. A RT-PCR Assay for Quantitative Detection of Bovine Viral Diarrhea Virus [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2021,36(9):1042−1047 doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2021.09.007

牛病毒性腹泻/黏膜病病毒荧光定量PCR检测方法的建立

doi: 10.19303/j.issn.1008-0384.2021.09.007
基金项目: 国家现代农业产业技术体系建设项目(CARS36);甘肃省青年科技基金计划(21JR7RA030);中国农业科学院科技创新工程协同创新项目(CAAS-XTCX2016011-01-09);中兽医与临床科技创新工程项目(CAAS-ASTIP-2015-LIHPS)
详细信息
    作者简介:

    张康(1987−),男,助理研究员,主要从事奶牛疾病诊断研究(E-mail:467863181@qq.com

    通讯作者:

    马倩(1991−),女,助理研究员,主要从事兽医临床诊断研究(E-mail:499462890@qq.com

    李建喜(1971−),男,研究员,主要从事奶牛疾病免疫学研究(E-mail:Lzjianxil@163.com

  • 中图分类号: S 852.62

A RT-PCR Assay for Quantitative Detection of Bovine Viral Diarrhea Virus

  • 摘要:   目的  设计一种能够快速检测出牛病毒性腹泻病毒(bovine viral diarrhea virus, BVDV)的方法。  方法  依据GenBank公布的BVDV 5′UTR基因属于特异性保守区域的前提,构建具有特异性的探针和引物,以体外转录病毒RNA作为绝对定量标准品。对荧光定量RT-PCR方法的各反应条件进行优化,创建BVDV荧光定量PCR检测方法。  结果  5.026 7 copies·μL−1是此检测方法的最低下限值,该方法拥有良好的重复性,变异系数在组内、组间均<1%。特异性较高,对其他病毒核酸的扩增均为阴性,如猪瘟病毒、口蹄疫病毒等。  结论  建立的BVDV荧光定量PCR方法敏感性高、特异性强、重复性好,为牛病毒性腹泻的早期诊断提供了重要的技术支撑。
  • 图  1  标准品引物扩增产物

    注:M为DNA marker;1为PCR产物;2为阴性对照。

    Figure  1.  Amplification products of RNA standard primers

    Note: M: DNA marker; 1: PCR product; 2: negative control.

    图  2  荧光定量PCR方法特异性试验

    注:A为阳性样品(BVDV NADL标准毒株);B为FMDV;C为IBRV;D为水(阴性对照);E为CSFV;F为PRRS。

    Figure  2.  Specificity of RT-PCR assay

    Note: A: BVDV positive control; B: FMDV; C: IBRV; D: negative control; E: CSFV; F: PRRS.

    图  3  荧光定量PCR敏感性试验

    Figure  3.  Sensitivity of RT-PCR assay

    图  4  荧光定量PCR标准曲线

    Figure  4.  Standard curve for RT-PCR assay

    图  5  荧光定量PCR重复性

    Figure  5.  Reproducibility of RT-PCR assay

    图  6  荧光定量PCR方法的应用

    注:1为阳性样品(BVDV NADL标准毒株);2~5为临床样品检出BVDV阳性。

    Figure  6.  Application of RT-PCR assay

    Note: 1: BVDV positive control, 2-5: BVDV positive clinical samples were detected.

    表  1  引物和探针

    Table  1.   Primers and probes applied

    引物名称
    Primers
    引物序列(5′→3′)
    Primer sequences(5′-3′)
    目的片段大小/bp
    Product size/bp
    A-FTAATACGACTCACTATAGGG-CATGCCCATAGTAGGAC325
    B-RTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTT CCATGTGCCATGTACAG
    Q-FGAGGGTAGCAACAGTGGTGA76
    Q-RAGGCGTCGAACCACTGACG
    探针FAM-GTGGTGAGTTCGTTGGATGGCT-BHQ1
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    表  2  核酸浓度

    Table  2.   Nucleic acid concentration

    扩增曲线
    Amplification curve
    核酸浓度
    Nucleic acid concentration(copies ·μL−1
    1 5.026 7×108
    2 5.0267×107
    3 5.026 7×106
    4 5.026 7×105
    5 5.026 7×104
    6 5.026 7×103
    7 5.026 7×102
    8 5.026 7×101
    9 5.026 7
    10 0.502 67
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    表  3  实时荧光定量PCR方法的变异系数

    Table  3.   Coefficients of variation between inter- and intra-groups of RT-PCR assay

    稀释度
    Dilution rate
    组内重复性 Reproducibility intra-batch 组间重复性 Reproducibility inter-batch
    Ct平均值
    Ct average values
    组内变异系数
    Coefficient of variation/%
    Ct平均值
    Ct average values
    组间变异系数
    Coefficient of variation/%
    浓度1 21.82±0.12 0.55 21.79±0.08 0.37
    浓度2 25.31±0.19 0.75 24.93±0.49 1.97
    浓度3 28.63±0.27 0.94 28.45±0.16 0.56
    浓度4 31.21±0.27 0.87 31.27±0.07 0.22
    浓度5 35.65±0.27 0.76 35. 14±0.48 1.37
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出版历程
  • 收稿日期:  2020-11-02
  • 修回日期:  2021-08-30
  • 网络出版日期:  2021-10-23
  • 刊出日期:  2021-09-28

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