Aseptic Sowing and Rapid Propagation of Anthurium crystallinum
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摘要: 无菌播种水晶花烛Anthurium crystallinum种子获得无菌苗,取该无菌苗的带节茎段、叶片、叶柄为外植体,研究不同诱导培养基组成对水晶花烛愈伤组织诱导分化的影响,同时对影响水晶花烛芽体增殖和壮苗生根的主要因子进行研究。结果表明:水晶花烛种子较好的灭菌方法:种子经去果皮处理+0.1%升汞消毒8 min;外植体愈伤诱导分化以带节茎段为宜,培养基为1/3MS+6-BA1.0 mg·L-1+2, 4-D 0.3 mg·L-1;芽体增殖培养基:MS+6-BA 2.0 mg·L-1+NAA 0.3 mg·L-1;壮苗生根培养基:MS+NAA 0.2 mg·L-1,其移栽成活率可达95%以上。Abstract: Anthurium crystallinum seedlings were aseptically obtained from seeds for the study. Stem segments with node, leaves and petiole were used as plantlets, and the main factors of callus induction and differentiation as well asthe bud proliferation and seedling rooting during the propagating process were investigated. The results showed that theseed disinfection could be satisfactorily achieved by treating the peeledseeds with 0.1% mercuric chloride for 8min; the optimal callus differentiation of theplantlets was to use the stem segment with node, and cultivated in medium containing 1/3 MS+6-BA 1.0 mg·L-1+2, 4-D 0.3 mg·L-1; the appropriate medium forthe bud proliferation was MS+6-BA 2.0 mg·L-1+NAA 0.3 mg·L-1; that the medium for optimal rooting was MS+NAA 0.2 mg·L-1; and a transplanting survival rate up to 95% could be achieved as a result.
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Key words:
- Anthurium crystallinum /
- seed pre-treatment /
- aseptic sowing /
- rapid propagation
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表 1 不同种子处理方式、不同消毒时间对种子灭菌效果和萌发的影响
Table 1. Effect of method and time ofpre-treatments on seed disinfection and germination
种子处理 消毒时间/min 接种数/株 污染数/株 污染率/% 发芽数/株 发芽率/% 带果皮 6 60 60 100.00A 0 0A 8 60 49 81.67B 1 9.09B 10 60 22 36.67C 1 2.63C 去果皮 6 60 38 63.33D 20 90.90D 8 60 5 8.33E 52 94.54E 10 60 1 1.67F 30 50.85F 注:同行数据后不同大小写字母分别表示差异达极显著水平(P < 0.01)和显著差异(P < 0.05),下表同。 表 2 不同诱导培养基组成对水晶花烛不同外植体愈伤组织诱导分化的影响
Table 2. Effect of different explants and media on callus induction and differentiation of A. crystallinum plantlets
培养基种类 外植体种类 接种数/株 产愈伤数/株 产愈伤率/% 芽体分化数/株 分化率/% 描述 MS+1.0 mg·L-1
6-BA带节茎段 30 10 33.3EFGefg 30 100.0Aa 芽基部形成愈伤,芽分化形成种苗 叶柄 40 8 20.0HJij 7 17.5Dd 切口处可诱导产生愈伤但部分分化成种苗 叶片 40 7 17.5Jj 0 0.0Gg 切口处形成愈伤但不分化 MS+1.0 mg·L-1
6-BA+0.3 mg·L-1
2, 4-D带节茎段 30 12 40.0CDEde 30 100.0Aa 芽基部形成愈伤,芽分化形成种苗 叶柄 40 17 42.5BCDcd 4 10.0EFef 切口处可诱导产生愈伤但部分分化成种苗 叶片 40 9 22.5HIJij 0 0.0Gg 切口处形成愈伤但不分化 MS+1.0 mg·L-1
6-BA+1.0 mg·L-1
2, 4-D带节茎段 30 15 50.0Bb 29 96.7Bb 芽基部形成愈伤,芽分化形成种苗 叶柄 40 16 40.0CDEde 5 12.5Ee 切口处可诱导产生愈伤但部分分化成种苗 叶片 40 13 32.5EFGfg 0 0.0Gg 切口处形成愈伤但不分化 1/3MS+1.0 mg·L-1
6-BA带节茎段 30 10 33.3EFGefg 28 93.3Cc 芽基部形成愈伤,芽分化形成种苗 叶柄 40 16 40.0CDEde 4 10.0EFef 切口处可诱导产生愈伤但部分分化成种苗 叶片 40 11 27.5GHIgh 0 0.0Gg 切口处形成愈伤但不分化 1/3MS+1.0 mg·L-1
6-BA+0.3 mg·L-1
2, 4-D带节茎段 30 19 63.3Aa 30 100.0Aa 芽基部形成愈伤,芽分化形成种苗 叶柄 40 20 50.0Bb 8 20.0Dd 切口处可诱导产生愈伤但部分分化成种苗 叶片 40 13 32.5EFGfg 0 0.0 Gg 切口处形成愈伤但不分化 1/3MS+1.0 mg·L-1
6-BA+1.0 mg·L-1
2, 4-D带节茎段 30 11 36.7DEFdef 30 100.0Aa 芽基部形成愈伤,芽分化形成种苗 叶柄 40 19 47.5BCbc 3 7.5Ff 切口处可诱导产生愈伤但部分分化成种苗 叶片 40 12 30.0FGHfg 0 0.0 Gg 切口处形成愈伤但不分化 表 3 不同基础培养基组成和不同6-BA对水晶花烛芽体增殖的影响
Table 3. Effect of basic media and 6-BA concentrations on bud multiplication of A. crystallinumplantlets
培养基组成 6-BA/(mg·L-1) 接种数/株 芽体增殖数/株 芽体增值倍数 描述 MS+NAA 0.3mg·L-1 1 30 68 2.27Aa 芽体基部膨大健壮,叶色黄绿,长势好,有少量生根 2 30 72 2.40Aa 芽体基部膨大健壮,叶色绿,长势较好,无生根 4 30 56 1.87ABab 芽体基部膨大健壮,叶色绿,长势好,无生根 MS+IBA 0.3mg·L-1 1 30 56 1.87ABab 芽体基部膨大健壮,叶色黄绿,长势好,有少量生根 2 30 60 2.00ABa 芽体基部膨大健壮,叶色绿,长势较好,无生根 4 30 40 1.33Bb 芽体基部膨大健壮,叶色绿,长势好,无生根 表 4 不同的激素种类和用量对水晶花烛生根的影响
Table 4. Effect of hormones and their concentrations onrooting ofA. crystallinumplantlets
激素种类 用量/(mg·L-1) 接种数/株 总根数/株 生根数/株 生根率/% 描述 NAA 0.1 40 114 2.85Aa 100 根短粗壮、芽生长良好、叶绿 0.2 40 128 3.20Ab 100 根短粗壮、芽生长良好、叶绿 0.4 40 124 3.10Aab 100 根短粗壮、芽生长良好、叶黄绿 IBA 0.1 40 84 2.10Bc 100 根长细壮、芽生长良好、叶绿 0.2 40 96 2.40Bc 100 根长细壮、芽生长良好、叶绿 0.4 40 93 2.33Bc 100 根长细壮、芽生长良好、叶黄绿 -
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